Диссертация на тему «Демографическая генетика городского населения», скачать бесплатно автореферат по специальности ВАК РФ 03.02.07 — Генетика

ЗАКЛЮЧЕНИЕ. Факторы динамики генетической изменчивости хвойных.

Анализ совокупности рассмотренных нами собственных и литературных данных позволил нам сделать некоторые заключения о сравнительной роли различных факторов в формировании уровней внутрипопуляционной, межпопуляционной и межвидовой компонент генетического разнообразия у хвойных.

Миграция в популяциях хвойных играет большую роль в обеспечении потенциальной возможности обмена генами, однако слабая дифференциация на ареалах большинства хвойных не является следствием не неограниченных генных потоков, а находится под контролем стабилизирующих форм естественного отбора в сходных экологических условиях, чему способствует большая продолжительность жизни и эврибионтность хвойных. Действие отбора нивелирует случайные флуктуации, снижаея таким образом роль дрейфа генов в формировании генетической структуры хвойных. В то же время относительно высокая дифференциация в условиях изоляции вызвана те только, и, вероятно, даже не столько прекращением обмена генами, сколько изменением векторов отбора, среди которых на первое место выходят отбор дизруптивный.

Интрогрессивная гибридизация у хвойных играет важную роль в адаптации и видообразовании. Весь комплекс рассмотренных данных позволяет сделать вывод, что гибридизационными механизмами нельзя пренебречь ни при рассмотрении адаптации популяций и видов на ареале, ни при реконструкции филогении, которую нужно рассматривать не как чисто кладогенетическую (путем дивергенции от общего предка), а как ретикулярную (сетчатую).

Полученные экспериментальные данные, рассмотренные в контексте всей мировой литературы по генетической структуре популяций у хвойных, позволяют сформулировать некоторые рекомендации практического характера. Применение принципов популяционной генетики в управлении лесными генетическим ресурсами становится все более актуальной задачей в современных условиях, когда всестороннее антропогенное воздействие на биосферу в целом, и на лесные экосистемы в частности, резко возросло.

Несмотря на то, что на современном этапе развития взаимоотношений человека и природы трудно ожидать снижения интенсивности эксплуатации лесов, накопленные данные об антропогенных воздействиях на генетическую структуру популяций древесных растений свидетельствуют, что консенсус все же может быть достигнут. Основой его может стать комплекс мер в международном масштабе, включающий статическую и динамическую консервацию генетических ресурсов, сопряженную с селекцией на продуктивность и устойчивость лесонасаждений, методы которой основаны на знании нативной популяционно-генетической структуры и факторов её динамики.

Показанное в данной работе действие стабилизирующего (в т.ч. балансирующего отбора в пользу гетерозигот по аллозимным локусам) отбора, а не механическая миграция формирует, в конечном итоге, генетическую структуру насаждений и оказывается важнейшим механизмом интеграции генофондов и является основой целостности вида. В то же время локальный отбор ведет к формированию адаптированных к местным условиям экотипов. Таким образом, генетическая структура хвойных имеет тенденцию к самоорганизации, и, чтобы не допустить ее необратимых изменений (часто в этом смысле употребляется не очень четкий термин «эрозия»), человеку достаточно не мешать лесам самовоспроизводиться. Для этого, безусловно, нужно больше знать о законах, управляющих этой самоорганизацией, и учитавать их в.

Устойчивая (robust, англ.) генетическая система древесных растений позволяет надеяться, что хорошо спланированная селекционная работа поможет не только поставлять более быстрорастущий материал для продукционных лесов, но и обеспечить сохранение генофондов лесообразующих древесных растений. Принципы этого подхода формулируются рядом положений: 1. Посвятить больше усилий изучению природных или «квазинативных» насаждений древесных для изучения естественных факторов динамики генофондов их популяций. Основными методами подобных исследований должны являться изучение уровней внутри- и межпопу ля ционной генетической изменчивости с помощью разных классов молекулярно-

генетических маркеров, сопряженной изменчивости этих маркеров с адаптивно- важными и хозяйственно- ценными признаками.

2. Признание уникальности генофонда каждой локальной популяции и усиление

в связи с этим контроля за интенсивностью и типами применяемых рубок. Обеспечение будущего существования местных генофондов с помощью как подхода охраны in situ (создание генетических резерватов), так и ex situ (сохранение генетического материала в банках семян, архивах клонов и дендрариях).

3. Признание и учёт инбридинга при формировании нового поколения хвойных

и определяющей балансирующей роли отбора в элиминации инбредного потомства и формировании зрелых насаждений. На практике это может реализовываться в создании условий для протекания естественного отбора на ранних стадиях онтогенеза (проростки, сеянцы) вместо дорогостоящих, занимающих многие десятилетия, а, главное, малоэффективных селекционных мероприятий (особенно «плюс-селекции»).

4. Массовый переход от устаревших схем «плюс»-селекции к современным методам генетического улучшения древесных, учитывающим популяционно-генетическую структуру и включающим поддержание мер по сохранению генетического разнообразия. Необходимость подчинения сиюминутных интересов лесной промышленности долгосрочным целям создания устойчивой лесосеменной базы.

5. Контроль за созданием и распространением генетически «улучшенных» клонов, особенно созданных с помощью генетической инженерии, а также гибридов. Признание опасности массового распространения обладающих повышенными лесоводственными характеристиками, но слабоустойчивых клонов, вариететов. Ужесточение санитарного контроля при интродукции экзотических древесных видов.

6. Разграничение функций продукционных лесов и генетических резерватов, определение соотношения их площадей для стабильного воспроизводства генетической изменчивости каждого древесного вида при сочетании естественного и неразрушительного искусственного воспроизводства.

7. Усиление контроля за абиотической средой в лесных экосистемах, в том числе защита от антропогенных пожаров, вспышек вредителей, промышленных загрязнений.

1. Разработаны новые подходы к оценке внутрипопуляционной, межпопу ля ционной и межвидовой изменчивости хвойных Северной Евразии, основанные на сравнительном популяционно-генетическом анализе комплекса родственных видов по единому набору генных локусов.

2. Аллозимные локусы у представителей семейства сосновых обнаруживают высокую изменчивость и эффективны для получения разнообразной информации о генетической структуре популяций. Описан генный контроль 17 изоферментных систем сосен подрода $1гоЪш и 16 изоферментных систем у елей. Обнаружено генетическое сцепление между аллозимными локусами у кедровых сосен. Выявлены группы сцепления Pgi-2 — Ас1И-1 — Ьар-З и ¥е$1-2 — Ьар-2 и подтвержден факт консерватизма групп сцепления у сосновых.

3. Изученные виды хвойных сем. сосновых Северной Евразии (кедровые сосны и комплекс европейской и сибирской елей) характеризуются высоким уровнем аллельного и генного разнообразия и слабой дифференциацией на ареале.

4. Уровень генного разнообразия кедровых сосен уменьшается в ряду от широкораспространенных к узкоареальным видам: Ртт ритйа > (Р. вхЪтса, Р. когтетхя) > Р. сетЬга. Кедровый стланик имеет высокое генетическое разнообразие, близкое к максимальным значениям, известным для хвойных и растений в целом, что связано с долговечностью и адаптацией этого вида к экстремальным для древесных условиям произрастания. Европейская кедровая сосна обладает сниженным уровнем полиморфизма вследствие инбридинга в небольших изолированных популяциях.

5. Анализ системы скрещивания и равновесия распределений генотипов у кедровых сосен показал, что дефицит гетерозигот среди зародышей обусловлен инбридингом вследствие самоопыления (у большинства видов 015%) и близкородственных скрещиваний. Частота самоопыления максимальна у Р. сетЬга (около 30%), что связано с низкой плотностью и эффективной численностью популяций этого вида.

6. У хвойных при формировании зрелого насаждения из пула зародышей происходит элиминация менее приспособленных инбредных потомков, в результате чего в выборках взрослых растений распределения генотипов, как

правило, близки к равновесным. В ряде случаев наблюдается слабый эксцесс гетерозигот, обусловленный балансирующим отбором.

7. Кластеризация и многомерный анализ популяций Pinus sibirica по аллозимным данным показал, что генетическая дифференциация выборок в целом соответствует их географическому происхождению и официально принятому лесосеменному районированию. Генетическая подразделенность незначительна лишь для зоны оптимума (горы Южной Сибири), более выражена в восточной части ареала и максимальна между северными и остальными выборками.

8. У Pinus cembra, несмотря на фрагментацию ареала, уровень генетической подразделенности был близок к наблюдаемому у Р. sibirica. Проведенный впервые совместный анализ популяций этих двух видов показал, что внутривидовая дифференциация перекрывает межвидовую, которая значительно меньше, чем между остальными видами мягких сосен. Это указывает на недавнее (в голоцене) прекращение потока генов между этими номинативными видами и ставит вопрос об их возможной конспецифичности и необходимости таксономической ревизии.

9. У Pinus koraiensis, в отличие от остальных видов кедровых сосен, кластеризация выборок по аллозимным данным слабо отражает их географическую локализацию, что объясняется единообразием экологических условий на ареале, способствующим балансирующему отбору и отсутствием серьезных барьеров для миграции.

10. Генетическая дифференциация популяций кедрового стланика отражает историю расселения и современное распространение вида. Три кластера выборок Р. pumila соответствуют их географическому происхождению: популяции Дальнего Востока, Байкальского региона и занимающие промежуточное положение между ними популяции зоны БАМ.

11. На основании полученных данных можно заключить, что популяции хвойных представляют собой не панмиктическую общность, а иерархическую структуру взаимосвязанных подразделенных популяций. Параметры этой структуры определяются эффективной численностью популяций, миграцией (включая ветроопыление и различные способы распространения семян), системой скрещивания, плейстоценовой и голоценовой историей, а также интрогрессивной гибридизацией.

12.Аллозимная дифференциация в пределах подрода Sirobus рода Pinus свидетельствует о том, что кедровые сосны не являются монофилетической группой, сестринской соснам подсекции Strobi. Виды подсекции Strobi являются парафилетической группой.

13. Выявлены и генетически протестированы естественные и искусственные межвидовые гибриды кедровых сосен. В зоне симпатрии Pinus sibirica и Р. pumila наблюдается межвидовая однонаправленная гибридизация через опыление материнских растений стланика пыльцой Р. sibirica, в ряде районов носящая массовый характер и приводящая к интрогрессии. Гибридизация регулярно наблюдается между эволюционно близкими видами хвойных и играет важную роль в видообразовании («сетчатая эволюция») и адаптации. На примере искусственных гибридов Р. sibirica х P. koraiensis показана перспективность межвидовых гибридов для интродукции и селекции.

14.Клинальная изменчивость по аллозимным л о кусам в популяциях палеарктического комплекса видов елей Picea abies — P. obovata сформировалась в результате сочетания нескольких факторов: истории расселения из разных плейстоценовых рефугиумов, широкомасштабной интрогрессивной гибридизацией и поддержания дифференциации локальным отбором в градиенте факторов среды.

15. Разработанные подходы создают основы мониторинга генетической изменчивости хвойных, что необходимо для реализации практических задач сохранения лесного биоразнообразия, рационального использования лесных генетических ресурсов, генетической паспортизации и сертификации в лесном семеноводстве.

СПИСОК ПУБЛИКАЦИЙ ПО ТЕМЕ РАБОТЫ:

Главы в коллективных монографиях.

1. Политов Д.В. Природные популяции — древесные растения // Динамика популяционных генофондов при антропогенных воздействиях. М.; Наука, 2004. С. 295-351.

2. Bruederle L.P., Rogers D.L., Krutovskii K.V., Politov D.V. Population genetics and evolutionary implications // Whitebark pine communities: Ecology and restoration. Washington D.C., USA: Island Press, 2000. P. 137-153.

Статьи в рецензируемых журналах и сборниках.

3. Белоконь М.М., Политов Д.В., Белоконь Ю.С., Алтухов Ю.П. Генетическая изменчивость европейской кедровой сосны, P. cembra L.: аллозимный полиморфизм в горных популяциях Альп и Восточных Карпат // Генетика. 2005. Т. 41. № 11. С. 1538-1551.

4. Белоконь М.М., Политов Д.В., Белоконь Ю.С., Крутовский К.В., Малюченко О.П., Алтухов Ю.П. Генетическая дифференциация сосен секции Strobus: Данные изоферментного анализа // Доклады РАН. 1998. V. 358. № 5. Р. 699-702.

5. Белоконь Ю.С., Политов Д.В., Белоконь М.М., Крутовский К.В. Наследование изоферментов сосны обыкновенной, Pinus sylvestris L. в Зауралье // Генетика. 1995. Т. 31. № И. С. 1521-1528.

6. Гончаренко Г.Г., Падутов В.Е., Крутовский К.В., Поджарова З.С., Киргизов Н.Ю., Политов Д.В. Уровень генетической изменчивости у Pinus sibirica на Алтае // Доклады академии наук СССР. 1988. Т. 299. № 1. С. 222-225.

7. Кравченко А.Н., Ларионова А.Я., Политов Д.В., Белоконь М.М., Белоконь Ю.С. Генетическая изменчивость и дифференциация популяций ели сибирской в Западном Саяне // Вестник Томского университета. 2004. С. 38-40.

8. Крутовский К.В., Политов Д.В., Алтухов Ю.П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение I. Механизмы генного контроля изоферментных систем // Генетика. 1987. Т. 23. № 12. С. 22162228.

9. Крутовский К.В., Политов Д.В., Алтухов Ю.П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение II. Уровень аллозимного полиморфизма в природной популяции Западного Саяна // Генетика. 1988. Т. 24. № 1. С. 118-124.

10. Крутовский К.В., Политов Д.В., Алтухов Ю.П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение IV. Генетическое

разнообразие и степень генетической дифференциации между популяциями // Генетика. 1989. Т. 25. № 11. С. 2009-2032.

П.Крутовский К.В., Политов Д.В. Алтухов Ю.П. Межвидовая генетическая дифференциация кедровых сосен Евразии по изоферментным локусам // Генетика. 1990. Т. 26. №4. С. 694-707.

12. Политов Д.В. Белоконь М.М., Белоконь Ю.С. Динамика аллозимной гетерозиготности в дальневосточных популяциях кедрового стланика Pinus pumila (Pall.) Regel: сравнение зародышей и материнских растений // Генетика. 2006. Т. 42. № 10. С. 1348-1358.

13. Политов Д.В., Крутовский К.В. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение V. Анализ системы скрещивания // Генетика. 1990. Т. 26. № 11. С. 1309-1316.

14. Политов Д.В., Крутовский К.В., Алтухов Ю.П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение III. Сцепление изоферментных локусов // Генетика. 1989. Т. 25. № 9. С. 1606-1618.

15.Политов Д.В., Крутовский К.В., Алтухов Ю.П. Характеристика генофондов популяций кедровых сосен по совокупности изоферментных локусов // Генетика. 1992. Т. 28. № 1. С. 93-114.

ló.Chumachenko S.I., Korotkov V.N., Palenova М.М., Politov D.V. Simulation dynamics of long-term stand dynamics at different scenarios of forest management for coniferous — broad-leaved forests // Ecological Modelling. 2003. V. 170. № 2-3. P. 345-361.

17.Iroshnikov A.I., Politov D.V. Five-needle pines in Russia and neighboring countries // Five-needle pine species: genetic improvement, disease resistance, and conservation. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32 (July 24-25, 2001, Medford, OR). Fort Collins, Colorado, USA: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station, 2004. P. 64-72.

18.Krutovskii K.V., Politov D.V. Allozyme evidence for polyzygotic polyembryony in Siberian stone pine (Pinus sibirica Du Tour) // Theoretical and Applied Genetics. 1995. V. 90. №6. P. 811-818.

19.Krutovskii K.V., Politov D.V., Altukhov Y.P. Study of genetic differentiation and phylogeny of stone pine species using isozyme loci // Proceedings — International workshop on subalpine stone pines and their environment: The status of our knowledge. (Ed. by W. C. Schmidt and F.-K. Holtmeier). Ogden, Utah: USDA Forest Service Intermountain Research Station, 1994. P. 19-30.

20. Krutovskii K.V., Politov D.V., Altukhov Y.P. Isozyme study of population genetic structure, mating system and phylogenetic relationships of the five stone pine species

(subsection Cembrae, section Strobi, subgenus Strobus) // Population genetics and genetic conservation of forest trees. Papers presented at an international symposium organized by IUFRO, held 24-28 August 1992 at Carcans-Maubuisson, France. Amsterdam, Netherlands: SPB Academic Publishing, 1995. P. 279-304.

21.Palenova M.M., Korotkov V.N., Chumachenko S.I., Politov D.V. The use of simulation model FORRUS-S in the ecological management in forestry: strategic and tactic planning // Scientia Forestalis. 2007. № 73. P. 73-90.

22. Politov D.V. Belokon M.M., Maluchenko O.P., Belokon Y.S., Molozhnikov V.N., Mejnartowicz L.E., Krutovskii K.V. Genetic evidence of natural hybridization between Siberian stone pine, Pinus sibirica Du Tour, and dwarf Siberian pine, P. pumila (Pall.) Regel // Forest Genetics. 1999. V. 6. № 1. P. 41-48.

23.Politov D.V. Krutovskii K.V. Allozyme polymorphism, heterozygosity, and mating system of stone pines (Pinus, subsection Cembrae) // Proceedings — International workshop on subalpine stone pines and their environment: The status of our knowledge. (Ed. by W. C. Schmidt and F.-K. Holtmeier). Ogden, Utah: USDA Forest Service Intermountain Research Station, 1994. P. 36-42.

24. Politov D.V. Krutovskii K.V. Phylogenetics, genogeography and hybridization of 5-needle pines in Russia and neighboring countries // Five-needle pine species: genetic improvement, disease resistance, and conservation. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32 (July 24-25, 2001, Medford, OR). Fort Collins, Colorado, USA: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station, 2004. P. 85-97.

25.Политов Д.В., Пирко H.H., Пирко Я.В., Мудрик E.A., Белоконь М.М., Коршиков И.И. Система скрещивания и возрастная динамика уровней инбридинга в популяциях Pinus cembra L. Украинских Карпат // Науков1 записки Терношльського национального педагопчного ушверситету ím. Володимира Гнатюка. Сер1я: Бюлопя. — 2007. — №3 (33). — С. 80-85.

Статьи в сборниках.

26. Алтухов Ю.П., Крутовский К.В., Духарев В.А., Ларионова А.Я., Политов Д.В., Рябоконь С. М. Биохимическая популяционная генетика лесных древесных видов // Лесная генетика, селекция и физиология древесных растений. М.: Госкомлес СССР, 1989. С. 21-29.

27.Ильинов А.А., Политов Д.В., Раевский Б.В., Белоконь М.М. Генетическая структура малонарушенных популяций ели финской Picea х fennica (Regel) Кот. // Проблемы лесоведения и лесоводства. Гомель: Институт леса 2005. С. 147-149.

28.Ильинов A.A., Политов Д.В. Раевский Б.В., Белоконь М.М. Особенности генетической структуры коренных ельников северо-запада таежной зоны России (на примере НП «Водлозерский») // Водлозерские чтения: Естественнонаучные и гуманитарные основы природоохранной и просветительской деятельности на охраняемых территориях Русскаого Севера. Петрозаводск: 2006. С. 93-96.

29. Крутовский К.В., Политов Д.В. Изучение меж- и внутривидовой дифференциации кедровых сосен Евразии с использованием изоферментных локусов и многомерного анализа // Молекулярные механизмы генетических процессов. Москва: Наука, 1992. С. 87-96.

30.Ларионова А.Я., Экарт А.К., Кравченко А.Н., Яхнева Н.В., Политов Д.В. Белоконь М.М., Белоконь Ю.С. Генетическое разнообразие хвойных в Сибири // Структурно-функциональная организация и динамика лесов. Красноярск: 2004. С. 53-55.

31.Малюченко О.П., Политов Д.В. Белоконь Ю.С., Белоконь М.М. Генетическая дифференциация кедрового стланика Pinus pumila (Pall.) Regel в Прибайкалье // Жизнь популяций в гетерогенной среде. Часть 2. Йошкар-Ола: Периодика Марий Эл, 1998. Т. 2. С. 38-45.

32.Мудрик O.A., Привал1хш С.М., Шрко Н.М., Пол1тов Д.В. Генетична м1нлив1сть материнських дерев та зародов íx насшня у р1зновисотних популящях Picea abies (L.) Karst, в Украшсысих Карпатах // Промышленная ботаника. — 2006. -Вып. 6.-С. 187-192.

33.Петрова Е.А., Горошкевич С.Н., Политов Д.В., Белоконь М.М., Белоконь Ю.С. Эколого-географическая дифференциация популяций сосны кедровой сибирской // Проблемы лесоведения и лесоводства. Гомель: Институт леса 2005. С. 176-178.

34. Политов Д.В., Крутовский К.В. Клинальная изменчивость и интрогрессивная гибридизация в популяциях европейской и сибирской елей // Жизнь популяций в гетерогенной среде. Йошкар-Ола: Периодика Марий Эл, 1998. Р. 78-89.

Тезисы докладов на конференциях:

35. Белоконь М.М., Политов Д.В. Оценка генетического разнообразия в популяциях корейской кедровой сосны (Pinus koraiensis Sieb, et Zucc.) // 1-ая молодежная школа-конференция «Сохранение биоразнообразия природных ресурсов» (27-30 сентября, 2000). Москва: ФГП «Интеграция», МГУ и РАН, 2000. С. 13.

36. Белоконь Ю.С., Политов Д.В. Белоконь М.М., Крутовский К.В. Генетическая дифференциация болотной и суходольной популяций сосны обыкновенной

(Pinus sylvestris L.) II Жизнь популяций в гетерогенной среде. Часть 2. Йошкар-Ола: Периодика Марий Эл, 1998. С. 23-24.

37. Белоконь Ю.С., Белоконь М.М., Голиков A.M., Политов Д.В. Сравнительный анализ генетической структуры сосняков Псковской области // Генетика в XXI веке: Современное состояние и перспективы развития. Москва: 2004. С. 192.

38. Белоконь М.М., Политов Д.В. Белоконь Ю.С. Геногеография сосны кедровой корейской (Pinus koraiensis Sieb, et Zucc.) и ее отношения с близкими видами сосен // Наука о лесе: история, современное состояние и перспективы развития. Гомель: Институт леса, 2005. С. 195.

39. Крутовский К.В., Политов Д.В. Аллозимный полиморфизм в природной популяции сосны сибирской Pinus sibirica Du Tour II Проблемы прикладной и популяционной генетики. М.: 1987. С. 142.

40.Малюченко О.П., Белоконь Ю.С., Белоконь М.М., Политов Д.В. Генетические особенности береговых и горных популяций кедрового стланика в Прибайкалье // Разнообразие растительного покрова Байкальского региона. Материалы международной конференции (7 — 10 сентября 1999 г.). Улан-Удэ: Изд-во Бурятского госуниверситета, 1999. С. 45-46.

41.Малюченко О.П., Белоконь Ю.С., Белоконь М.М., Политов Д.В. Параметры системы скрещивания межвидового гибрида Pinus sibirica х Pinus pumila по данным изоферментного анализа // Научная генетическая конференция МСХА. М.: МСХА, 2002. С. 224-225.

42. Малюченко О.П., Политов Д.В. Белоконь Ю.С. Аллозимная гетерозиготность и инбридинг в популяциях кедрового стланика // Научная конференция молодых ученых «Ломоносов». Москва: Московский государственный университет, 1996.

43. Политов Д.В. Генетика популяций кедровых сосен // Проблемы лесоведения и лесоводства. Гомель: Институт леса, 2005. С. 178-179.

44. Политов Д.В. Белоконь М.М., Белоконь Ю.С., Крутовский К.В., Алтухов Ю.П. Генетика популяций кедровых сосен // Генетика в России и в мире. Материалы международной конференции. Москва: Институт общей генетики РАН, 2006. С. 156.

45. Политов Д.В., Белоконь М.М., Малюченко О.П., Белоконь Ю.С., Крутовский К.В. Генетические доказательства естественной гибридизации между сибирской кедровой сосной Pinus sibirica и кедровым стлаником Pinus pumila (Pinaceae) II Проблемы ботаники на рубеже XX — XXI веков. Тезисы докладов представленных II (X) съезду Русского ботанического общества, 26 — 29 мая 1998 г. Санкт-Петербург: 1998. Т. 2. С. 180.

46.Politov D.V. Population genetic structure dynamics in forest tree species with continuous and fragmented types of species ranges // Transformation to Continuous Cover Forestry in a Changing Environment, EFI conference. Bangor, Wales: European Forest Institute, 2004. P. 73.

47.Politov D.V., Palenova M.M., Korotkov V.N., Belyaeva T.V., Chumachenko S.I. Genecological database of Norway spruce in population genetic studies and ecomodelling // IUFRO Conference «Monitoring and Indicators of Forest Biodiversity in Europe — from Ideas to Operationality», 12 — 15 November 2003, Florence, Italy. 2003. P. 45.

48.Belokon M.M., Politov D.V., Belokon Yu.S. Contrasting patterns of spatial genetic differentiation in two East Asian five-needle pine species, Pinus koraiensis and P. armandii // IUFRO Working Party 2.02.15 The Breeding and Genetic Resources of Five-Needle Pines Conference, Valiug, Romania, Sept. 19-23, 2006. P. 6-7.

49. Politov Р.V., Belokon M.M., Belokon Yu.S. Allozyme variation in Swiss stone pine, Pinus cembra L. and Siberian stone pine, P. sibirica Du Tour: differentiation between populations and species // IUFRO Working Party 2.02.15 The Breeding and Genetic Resources of Five-Needle Pines Conference, Valiug, Romania, Sept. 19-23, 2006. P. 10-11.

50.Petrova E.A., Goroshkevich S.N., Politov D.V. Belokon M.M., Belokon Yu.S. Genetic Structure and Mating System of Pure Species and Hybrids in the Hybrid Zone Between Pinus sibirica Du Tour and Pinus pumila (Pall.) Regel // IUFRO Working Party 2.02.15 The Breeding and Genetic Resources of Five-Needle Pines Conference, Valiug, Romania, Sept. 19-23, 2006. P. 7-8.

Методические пособия.

51.Политов Д.В., Салменкова E.A., Глазер В.М. Метод электрофоретического анализа изоферментных систем: изучение генетического полиморфизма белков в популяциях. Методическое пособие к Большому практикуму по генетике на кафедре генетики и селекции Биологического факультета МГУ. М.: Диалог-МГУ, 2000. 22 с.

52.Сулимова Г.Е., Салменкова Е.А., Политов Д.В., Зинченко В.В., Глазер В.М. Практикум по полиморфизму ДНК и белков. Методическое руководство. М.: Ойкос, 2002. 80 с.

Алтухов Ю. П. Генетические процессы в популяциях. Москва: Наука, 1983.-279 с.

Алтухов Ю. П. Балансирующий отбор как фактор поддержания аллозимного полиморфизма// Успехи современной биологии.-1989а.-Т. 107.-№ З.-С. 323-340.

Алтухов Ю. П. Генетические процессы в популяциях. Изд. 2-е. Москва: Наука, 1989Ь.-328 с.

Алтухов Ю. П. Внутривидовое генетическое разнообразие: мониторинг и принципы сохранения//Генетика.-1995.-Т. 31.-№ 10.-С. 1333-1357.

Алтухов Ю. П. Аллозимная гетерозиготность, возраст первой репродукции и продолжительность жизни у древесных // Доклады РАН.-1996а.-Т. 351.-№ 6.-С. 837-840.

Алтухов Ю. П. Гетерозиготность генома, скорость полового созревания и продолжительность жизни // Доклады PAH.-1996b.-T. 348.-№ 6.-С. 842-845.

Алтухов Ю. П. Аллозимная гетерозиготность, скорость полового созревания и продолжительность жизни // Генетика.-1998.-Т. 34.-№ 7.-С. 908-919.

Алтухов Ю. П. Гетерозиготность генома, интенсивность метаболизма и продолжительность жизни // Доклады РАН.-1999а.-Т. 369.-№ 5.-С. 704-707.

Алтухов Ю. П. Природоохранная генетика // Экология в России на рубеже XXI века. М.: Научный мир, 1999Ь.-С. 9-26.

Алтухов Ю. П. Генетические процессы в популяциях. Изд. 3-е. Москва: ИКЦ Академкнига, 2003.-431 с.

Динамика популяционных генофондов при антропогенных воздействиях, (под М.: Наука, 2004.-619 с.

Алтухов Ю. П., Дуброва Ю. Е. Биохимический полиморфизм популяций и его биологическое значение // Успехи современной биологии.-1981.-Т. 91.-№ З.-С. 467-480.

Алтухов Ю. П., Корочкин JL И., Рычков Ю. Г. Наследственное биохимическое разнообразие в процессах эволюции и индивидуального развития // Генетика. -1996.-Т. 32.-№ 6.-С. 1450-1473.

Алтухов Ю. П., Рычков Ю. Г. Популяционные системы и их структурные компоненты, генетическая стабильность и изменчивость // Журнал общей биологии.-1970.-Т. 31.-№ 5.-С. 507-525.

Алтухов Ю. П., Гафаров Н. И., Крутовский К. В., Духарев В. А. Аллозимный полиморфизм в природной популяции ели европейской Picea abies (L.) Karst. Сообщение 3. Корреляция между уровнями гетерозиготности и относительным количеством нежизнеспособных семян // Генетика.-1986а.-Т. 22.-№ 12.-С. 28252830.

Алтухов Ю. П., Крутовский К. В., Гафаров Н. И., Духарев В. А., Морозов Г. Ф. Аллозимный полиморфизм в природной популяции ели европейской Picea abies (L.) Karst. Сообщение 1. Системы полиморфизма и механизмы их генного контроля // Генетика.-1986b.-T. 22.-№ 8.-С. 2135-2151.

Андреев В. Н. Дендрология. Киев: Государственное издательство Украины, 1925.-145 с.

Арефьева JL П., Семихов В. Ф., Гринаш М. Н., Новожилова О. А., П.В. М. Иммунохимические связи в роде Pinus и его взаимоотношения с другими родами семейства Pinaceae // Бюллетень ГБС РАН.-2000.-Т. Вып. 179.-№ 126132.

Бакшаева В. И. Изменчивость видов ели в Карелии // Вопросы лесоведения и лесной энтомологии в Карелии. M.-JI.: Изд-во АН СССР, 1962.-С. 28-39.

Бакшаева В. И. Изменчивость и формовое разнообразие ели в Карелии. Автореф. дис. канд. биол. наук. Петрозаводск: 1966.-26 с.

Белоконь М. М., Политов Д. В., Белоконь Ю. С., Алтухов Ю. П. Аллозимный полиморфизм европейской кедровой сосны, P. cembra L. в горных популяциях Альп и Восточных Карпат//Генетика.-2005.-Т. 41.-№ 11.-С. 1538-1551.

Бех И. А. Кедровники Южного Приобья. Новосибирск: Наука, СО, 1974.-212 с.

Бех И. А., Таран И. В. Сибирское чудо-дерево. Новосибирск: Наука, Сибирское отделение, 1979.-125 с.

Бобров А. В. Филогения хвойных (анализ современных представлений). М.: Наука, 2002.-194 с.

Бобров Е. Г. Об особенности флоры эрратической области // Советская ботаника.-1944.-Т. 2.-С. 3-20.

Бобров Е. Г. Интрогрессивная гибридизация в флоре Байкальской Сибири // Ботанический журнал.-1961.-Т. 46.-№ 313-327.

Бобров Е. Г. Интрогрессивная гибридизация, формообразование и смены растительного покрова// Ботанический журнал.-1972.-Т. 57.-№ 8.-С. 865—879.

Бобров Е. Г. Интрогрессивная гибридизация в роде Picea A. Dietr. // Тр. Ин-та экологии растений и животных УНЦ АН СССР.-1974.-Т. 90.-№ 60—66.

Бобров Е. Г. Лесообразующие хвойные СССР. Л.: Наука, 1978.-188 с.

Боркин Л. Я., Даревский И. С. Сетчатое (гибридогенное) видообразование у позвоночных // Журнал общей биологии.-1980.-Т. 41.-№ 4.-С. 485-506.

Бударагин В. А. Анализ кариотипов изолированных популяций сосны обыкновенной (Pinns sylvestris L.) в Северном и Центральном Казахстане // Генетика,-1973.-Т. 9.-№ 9.-С. 41-52.

Буторина А. К., Мурая Л. С. Кариологическое изучение видов — интродуцентов // Актуальные проблемы генетики и селекции: Тез. обл. науч. конф. Воронеж, отд-ния ВОГиС им. Н. И. Вавилова. Воронеж: 1976.-С. 11-12.

Буторина А. К., Мурая Л. С., Исаков Ю. Н. Особенности функционирования ядрышковых организаторов хромосом сосны обыкновенной // Селекционные основы повышения продуктивности лесов. Воронеж: 1979а.-С. 47—52.

Буторина А. К., Мурая Л. С., Исаков Ю. Н. Спонтанный мутагенез у сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.). Первый случай обнаружения мутанта с кольцевой и добавочной хромосомами // Доклады АН CCCP.-1979b.-T. 248.-№ 4.-С. 977—979.

Буторина А. К., Мурая JI. С., Поджидаева И. М., Белозерова М. М., Хатунцева JI. Н. Вариации по числу и локализации вторичных перетяжек в хромосомном наборе сосны обыкновенной // Структура и функции клеточного ядра: Тез. сообщ. УВсесоюз. симпозиума. М.: 1975.-С. 168—169.

Беликов А. В., Потенко В. В. Генетические ресурсы сосны корейской на Дальнем Востоке России. М.: Наука, 2006.-174 с.

Видякин А. И. Изменчивость формы шишек в популяциях сосны обыкновенной на востоке Европейской части СССР // Лесоведение.-1991а.-Т. З.-С. 45-52.

Видякин А. И. Индексная оценка признаков популяционной структуры сосны обыкновенной// Лесоведение.-199Ib.-Т. 1.-С. 57-62.

Восточноевропейские широколиственные леса. М.: Наука, 1994.-364 с.

Гафаров Н. И. Аллозимный полиморфизм в природной популяции ели европейской Picea abies (L.) Karst. // Дисс. канд. биол. наук. М.: Институт общей генетики им. Н. И. Вавилова АН СССР, 1989.-103 с.

Геологический словарь. М.: Недра, 1973.-487 с.

Герман А. Б. Позднемеловой климат Евразии и Аляски. Труды Геологического института, вып. 559. М.: Наука, 2004.-157 с.

Голубец М. А. Современная трактовка вида Picea abies (L.) Karst, и его внутривидовых таксонов // Ботанический журнал.-1968.-V. 53.-№ 8. -Р. 10481062.

Гончаренко Г. Г. Геносистематика и эволюционная филогения лесообразующих хвойных Палеарктики. Минск: Тэхналопя, 1999.-192 с.

Гончаренко Г. Г., Падутов В. Е. Популяционная и эволюционная генетика елей Палеарктики. Гомель: ИЛ HAH Б, 2001.-197 с.

Гончаренко Г. Г., Потенко В. В. Изменчивость и дифференциация у ели европейской Picea abies (L.) Karst, в популяциях Украины, Белоруссии и Латвии //Доклады АН СССР.-1990.-Т. 314.-№ 2.-С. 492-496.

Гончаренко Г. Г., Потенко В. В. Параметры генетической изменчивости и дифференциации в популяциях ели европейской {Picea abies (L.) Karst, и ели сибирской {Picea obovaîa Ledeb.) // Генетика.-1991.-Т. 27.-№ Ю.-С. 1759-1772.

Гончаренко Г. Г., Силин А. Е. Популяционная и эволюционная генетика сосен Восточной Европы и Сибири. Минск: Тэхналопя, 1997.-191 с.

Гончаренко Г. Г., Падутов В. Е., Крутовский К. В., Поджарова 3. С., Киргизов Н. Ю., Политов Д. В. Уровень генетической изменчивости у Pirns sibirica на Алтае // Доклады академии наук СССР.-1988.-Т. 299.-№ 1.-С. 222-225.

Гончаренко Г. Г., Падутов В. Е., Поджарова 3. С., Крутовский К. В. Генетическая изменчивость у кедровой сосны сибирской // Доклады Академии наук БССР.-1987.-Т. 31.-№ 9.-С. 848-851.

Гончаренко Г. Г., Падутов В. Е., Силин А. Е. Степень генетической подразделенное™ и дифференциации в природных популяциях кедровых сосен // Доклады академии наук СССР.-1991а.-Т. 317.-№ 6.-С. 1477-1483.

Гончаренко Г. Г., Падутов В. Е., Силин А. Е. Генетическая изменчивость и дифференциация у Pinns pumila (Pall.) Regel в популяциях Чукотки и Сахалина // Генетика.-1992а.-T. 28.-№ 7.-С. 107-119.

Гончаренко Г. Г., Падутов В. Е., Силин А. Е. Генетическая структура, изменчивость и дифференциация в популяциях Pinns sibirica Du Tour // Генетика.-1992b.-T. 28.-№ Ю.-С. 114-128.

Гончаренко Г. Г., Потенко В. В., Абдыганыев Н. Изменчивость и дифференциация в природных популяциях ели тян-шанской Picea schrenkiana Fisch, et Mey. // Генетика.-1992с.-Т. 28.-№ 11.-С. 83-95.

Гончаренко Г. Г., Потенко В. В., Слободан Я. Н., Сидор А. И. Генетико-таксономические взаимоотношения между Picea abies (L.) Karst., P. montana Schur, и P. obovata Ledeb. // Доклады АН БССР.-1990.-Т. 34.-№ 4.-С. 361-364.

Гончаренко Г. Г., Силин А. Е., Падутов В. Е. Анализ сцепления и локализация некоторых генов, кодирующих изоферменты у сосны обыкновенной {Pinns sylvestris L.) и сосны крымской {Pinus pallasiana Asch., Graebn.) II Доклады АН CCCP.-1991b.-T. 321.-№6.-C. 1264-1268.

Горошкевич С. Н. О возможности естественной гибридизации Pinus sibirica и Pinns pnmila (Pinaceae) в Прибайкалье II Ботанический журнал.-1999.-Т. 84.-№ 9.-С. 48-57.

Горошкевич С. Н. О межвидовых взаимоотношениях российских видов Pinus из группы СетЪгае в зонах перекрытия их ареалов // Проблемы вида и видообразования. Томск: 2000.-С. 36-38.

Горошкевич С. Н. Новые данные о возможности естественной гибридизации Pinus sibirica и Pinus pumita в байкальской части ареалов // Флора и растительность Сибири и Дальнего Востока. Чтения памяти JI.M. Черепнина. Мат. III Рос. конф. Красноярск: РБО, Красноярское отделение, 2001.-С. 196-198.

Грант В. Видообразование у растений. М.: Мир, 1984.-528 с.

Грант В. Эволюционный процесс (критический обзор эволюционной теории). М.: Мир, 1991.-488 с.

Гричук В. П. Растительность Европы в позднем плейстоцене // (под. ред.: И. П. Герасимов, А. А. Величко) Палеогеография Европы за последние сто тысяч лет. М.: Наука, 1982.-С. 92-109.

Гросвальд М. Г. Катастрофические наводнения в Евразии и полярных областях. М.: Научный мир, 1999.-120 с.

Гроссет Г. Э. Кедровый стланик. Материалы к изучению и хозяйственному использованию. М.: Изд-во Московского общества испытателей природы, 1959.140 с.

Данилов Д. Н. Изменчивость семенных чешуй Picea excelsa Link. II Ботанический журнал.-1943.-Т. 28.-№ 5.-С. 191-202.

Динамика лесных биогеоценозов Сибири. Новосибирск: Наука, 1980.-

Добровольский В. К. Кедровые леса СССР и их использование. М.: Лесная промышленность, 1964.-186 с.

Дорофеев П. И. Третичные флоры бассейна р. Омолой // История флоры и растительности Евразии. Л.: Наука, 1972.-С. 41-113.

Древесные породы мира, в 3-х тт. М.: Лесная промышленность, 1982.-

Дыренков С. А. Изменчивость некоторых морфологических признаков в гибридных популяциях ели Picea abies (L.) Karst x Picea obovata Ledeb. на Вепсовской возвышенности // Ботанический журнал.-1978.-Т. 63.-№ 2.-С. 191205.

Дыренков С. А. Структура и динамика таежных ельников. Л.: Наука, 1984.-176 с.

Жерихин В. В. Избранные труды. М.: Т-во научных изданий КМК, 2003.-542 с.

Животовский Л. А. Показатель сходства популяций по полиморфным признакам //Журнал общей биологии.-1979а.-Т. 40.-№ 4.-С. 587-602.

Животовский Л. А. Статистические методы анализа частот генов в природных популяциях // Итоги науки и техники. Серия общая генетика. Т. 8. Теоретическая популяционная генетика. М.: ВИНИТИ, 1979Ь.-С. 76-104.

Животовский Л. А. Интеграция полигенных систем в популяциях. М.: Наука, 1984.-183 с.

Животовский Л. А. Популяционная биометрия. М.: Наука, 1991.-271 с.

Животовский Л. А., Духарев В. А. Гаметическая интеграция у сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) // Молекулярные механизмы генетических процессов. Молекулярная генетика, эволюция и молекулярно-генетические основы селекции. М.: Наука, 1985.-С.

Земляной А. И. Полиэмбриональные семена кедра сибирского в условиях высокогорья // Половая репродукция хвойных. Материалы I Всесоюзного симпозиума. Новосибирск: Наука, 1973.-С. 96-99.

Ирошников А. И. Полиморфизм популяций кедра сибирского // Изменчивость древесных растений Сибири. Красноярск: Изд-во ИЛиД СО РАН, 1974.-С. 77103.

Ирошников А. И. Кедровые сосны // Орехоплодные лесные культуры. М.: Лесная промышленность, 1978.-С. 236-254.

Кеппен Ф. Географическое распространение хвойных деревьев в Европейской России и на Кавказе // Записки Академии наук.-1885.-Т. 50, Прил. 4.-С. 1-638.

Козубов Г. М., Муратова Е. А. Современные голосеменные. Л.: Наука, 1986.-192 с.

Козубов Г. М., Тренин В. В., Тихова М. А., Кондратьева В. П. Репродуктивные структуры голосеменных. Л.: 1982.-104 с.

Колесников Б. П. Корейский кедр на советском Дальнем Востоке // Комаровские чтения. Владивосток: 1954.-С. 23-67.

Колесников Б. П. Кедровые леса Дальнего Востока. Тр. Дальневосточного филиала АН СССР. 2(41). М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1956.-262 с.

Колесников Б. П. Кедровые сосны и кедровые леса СССР // Лесное хозяйство и промышленное потребление древесины в СССР (Доклады К VI Мировому лесному конгрессу). М.: 1966.-С. 395-403.

Берингия в кайнозое, (под Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1976.-594 с.

Концепция устойчивого управления лесами Российской Федерации. М.: Федеральная служба лесного хозяйства, 1998.-15 с.

Коропачинский И. Ю. Изучение гибридизационных процессов в дендрофлоре Сибири // Труды Института экологии растений и животных.-1975.-Т. 91.-С. 3037.

Коропачинский И. Ю., Милютин Л. И. Естественная гибридизация древесных растений. Новосибирск: Академическое издательство «Гео», 2006.-233 с.

Короткий А. М., Гребенникова Т. А., Губарева Н. К. Климатические смены на территории юга Дальнего Востока в позднем плейстоцене-голоцене // Вестник ДВО РАН.-1997.-Т. З.-С. 121-143.

Корочкин Л. И., Серов О. Л., Пудовкин А. И., др. и. Генетика изоферментов. М.: Наука, 1977.-278 с.

Коршиков И. И., Мудрик Е. А. Генетическая гетерогенность урожая семян разных лет в природной популяции сосны крымской // (под. ред.: М. В. Роик)

Фактори експериментальной еволюцп органюмов. Кшв: Аграрна думка, 2004.-С. 234-238.

Коршиков И. И., Мудрик Е. А. Генетическая изменчивость растений и зародышей семян Pinus pallasiana D. Don в высотных поясах популяции горного Крыма // Экология.-2006.-Т. 2.-С. 89-94.

Коршиков И. И., Макогон И. В., Морозова Н. Н., Пирко Я. В. Гетерозиготностъ и индивидуальная изменчивость доли полных и пустых семян у ели европейской (Picea abies (L.) Karst, в первичном интродукционном насаждении // 1нтродукщя рослин.-2002.-Т. 3-4.-С. 88-92.

Коршиков И. И., Мудрик Е. А., Терлыга Н. С. Анализ генетической гетерогенности зародышей семян у деревьев с разной семенной продуктивностью в популяции сосны крымской (Pinus pallasiana D. Don) в Крыму// Цитология и генетика.-2005.-Т. 39.-№ 2.-С. 27-33.

Кравченко А. Н., Ларионова А. Я. Генетический контроль изоферментов ели сибирской (Picea obovata Ledeb.) в Приенисейской Сибири // Вестник СВНЦ ДВО РАН.-2006.-Т. 2.-С. 67-74.

Кравченко А. Н., Ларионова А. Я., Политов Д. В., Белоконь М. М., Белоконь Ю. С. Генетическая изменчивость и дифференциация популяций ели сибирской в Западном Саяне // Проблемы вида и видообразования. Томск: Томский государственный университет, 2004.-С. 38-40.

Критерии и индикаторы. Критерии и индикаторы для сохранения и устойчивого развития бореальных лесов. Монреальский процесс. М.: ВНИИЦлесресурс, 1995.-26 с.

Крутовский К. В. От популяционной генетики к популяционной геномике лесных древесных видов: интегрированный популяционно-геномный подход // Генетика.-2006.-Т. 42.-№ 10.-С. 1304-1318.

Крутовский К. В., Гафаров Н. И. Наследование 6-фосфоглюконатдегидрогеназы ели европейской Picea abies (L.) Karst. Межаллельное взаимодействие локусов 6-Pgd-2 и 6-Pgd-3 II Генетика.-1987.-Т. 23.-№ 11.-С. 2073-2075.

Крутовский К. В., Политов Д. В. Изучение меж- и внутривидовой дифференциации кедровых сосен Евразии с использованием изоферментных локусов и многомерного анализа // Молекулярные механизмы генетических процессов. Москва: Наука, 1992.-С. 87-96.

Крутовский К. В., Политов Д. В., Алтухов Ю. П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение I. Механизмы генного контроля изоферментных систем // Генетика.-1987.-Т. 23.-№ 12.-С. 2216-2228.

Крутовский К. В., Политов Д. В., Алтухов Ю. П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour, сообщение II. Уровень аллозимного полиморфизма в природной популяции Западного Саяна. // Генетика,- 1988.-Т. 24.-№ 1.-С. 118-124.

Крутовский К. В., Политов Д. В., Алтухов Ю. П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour, сообщение IV. Генетическое разнообразие и степень генетической дифференциации между популяциями. // Генетика.-1989.-Т. 25.-№ 11.-С. 2009-2032.

Крутовский К. В., Политов Д. В., Алтухов Ю. П. Межвидовая генетическая дифференциация кедровых сосен Евразии по изоферментным локусам // Генетика.-1990.-Т. 26.-№4.-С. 694-707.

Крылов Г. В. Леса Западной Сибири. История изучения, типы лесов, районирование, пути использования и улучшения. М.: Изд-во АН СССР, 1961.257 с.

Крылов Г. В., Потапович В. И., Кожеватова Н. Ф. Типы леса Западной Сибири. Новосибирск: 1958.-210 с.

Крылов Г. В., Таланцев Н. К., Козакова Н. Ф. Кедр. М.: Лесная промышленность, 1983.-216 с.

Куприянова Л. А., Литвинцева М. В. Группа Cembra рода Pinus, ее объем и связи по палинологическим данным // Ботанический журнал.-1974.-Т. 59.-№ 5,-С. 630-644.

Ларионова А. Я. Наследование аллозимных вариантов у ели сибирской (Picea obovata Ledeb.) // Генетика.-1995.-Т. 31.-№ 9.-С. 1261-1267.

Ларионова А. Я., Экарт А. К., Кравченко А. Н., Яхнева Н. В., Политов Д. В., Белоконь М. М., Белоконь Ю. С. Генетическое разнообразие хвойных Сибири // Структурно-функциональная организация и динамика лесов: Материалы Всероссийской конференции. Красноярск: Институт леса им. В.Н. Сукачева СО РАН, 2004а.-С. 53-55.

Ларионова А. Я., Яхнева Н. В., Абаимов А. П. Генетическое разнообразие и дифференциация популяций лиственницы Гмелина в Эвенкии (Средняя Сибирь) // Генетика.-2004b.-T. 40.-№ 10.-С. 1370-1377.

Ларионова А. Я., Яхнева Н. В., Кузьмина Н. А. Генетическая изменчивость лиственницы сибирской в Нижнем Приангарье // Лесоведение.-2003.-Т. 4.-С. 1722.

Левитес Е. В. Генетика изоферментов растений. Новосибирск: Наука, 1986.-144 с.

Левонтин Р. Генетические основы эволюции. М.: Мир, 1978.-352 с. Леса СССР. М.: Наука, 1969.-

Лесосеменное районирование основных лесообразующих пород в СССР. М.: Лесная промышленность, 1982.-368 с.

Ли Ч. Введение в популяционную генетику. М.: Мир, 1978.-555 с.

Литвинцева М. В. Особенности строения клеток паренхимы хвои у видов группы Cembra рода Pinns II Ботанический журнал.-1974.-Т. 10.-С. 1501-1505.

Малышев Л. И. Ошибочное мнение о произрастании кедрового стланика Pinns pumita (Pall.) Rgl. а Саянах II Ботанический журнал.-1960.-Т. 45.-№ 5.-С. 737739.

Мейен С. В. Органы размножения голосеменных и их эволюция (по палеоботаническим данным) // Журнал общей биологии.-1982.-Т. 43.-№ З.-С. 303-323.

Мейен С. В. Основы палеоботаники. Справочное пособие. Москва: Недра, 1987.-403 с.

Мейен С. В. Эволюция и систематика высших растений по данным палеоботаники. Москва: Наука, 1992.-173 с.

Меликян А. Л., Бобров А. В. Особенности репродуктивной стратегии и принципы диссеминации у растений-интродуцентов на примере рода Ртт Ь. и других представителей семейства Ршасеае Аёаш. // Материалы XXII научного совещания ботанических садов Северного Кавказа, посвященного 25-летию Субтропического ботанического сада Кубани. Сочи: 2003.-С. 53-56.

Меликян А. Л., Бобров А. В., Сорокин А. Л. Филогения СошГегае 8.1. по данным сравнительной морфологии женских репродуктивных органов // Материалы симпозиума, посвященного памяти Сергея Викторовича Мейена. М.: ГЕОС, 2001.-С. 131-135.

Милютин Л. И. Интрогрессивная гибридизация и ее значение для селекции древесных пород Сибири // Материалы науч. конф. по изучению лесов Сибири и Дальнего Востока (селекция, семеноводство и интродукция древесных пород). Красноярск: ИЛид СО АН СССР, 1965.-С. 18-23.

Милютин Л. И. Гетерозисные формы лиственницы Чекановского // Лесное хозяйство.-1967.-Т. 7.-С. 48-50.

Милютин Л. И. Проблемы изучения гибридных популяций древесных растений // Вопросы лесоведения. Красноярск: ИЛиД СО АН СССР, 1970.-С. 303-310.

Милютин Л. И. Исследование популяций лиственниц методами фенетики // (под. ред.: А. В. Яблоков) Фенетика популяций. Москва: Наука, 1982.-С. 255260.

Милютин Л. И. Взаимоотношения и изменчивость близких видов древесных растений в зонах контакта их ареалов (на примере лиственниц сибирской и даурской): Дис. д-ра биол. наук. Красноярск: ИЛиД СО АН СССР, 1983.-418 с.

Милютин Л. И. Естественная гибридизация лиственниц сибирской и даурской на территории МНР // Природные условия и биологические ресурсы

Монгольской Народной Республики: Тез. докл. Междунар. конф. М.: Наука, 1986.-С. 93-94.

Милютин JI. И., Круклис М. В. Опыт анализа гибридных популяций лиственниц Забайкалья //Лесоведение.-1968.-Т. 100—104.

Милютин Л. И., Муратова Е. Н., Ларионова А. Я. Генетико-таксономический анализ популяций лиственницы сибирской и Сукачева // Лесоведение.-1993.-Т. 5.-С. 55-63.

Моложников В. Н. Кедровый стланик горных ландшафтов Северного Прибайкалья. Л.: Наука, 1975.-203 с.

Мочалова О. А. О новом местонахождении ели сибирской (Picea obovata Ledeb.) на Крайнем Северо-Востоке Азии // Ботанический журнал.-1996.-V. 81.-№ 12. -Р. 127-133.

Мочалова О. А., Хорева М. Г. Флористические находки на юге Магаданской области//Ботанический журнал.-1999.-Т. 84.-№2.-С. 133-139.

Мудрик Е. А. Динамика генетической структуры природных популяций некоторых видов семейства Pinaceae в Украине. Дисс. канд. биол. наук. Киев: 2006.-200 с.

Муратова Е. Н., Круклис М. В. Хромосомные числа голосеменных растений. Новосибирск: Наука, Сибирское отделение, 1988.-118 с.

Нейштадт М. И. О корейском кедре на советском Дальнем Востоке, как «реликте» третичного времени // Доклады академии наук СССР.-1952.-Т. 86.-№ 2.-С. 425-428.

Нейштадт М. И. История растительного покрова СССР по данным пыльцевого анализа// Вопросы ботаники. М.: Изд-во АН СССР, 1954.-С. 575-590.

Нейштадт М. И. История лесов и палеогеография СССР в голоцене. М.: Изд-во АН СССР, 1957.-404 с.

Непомилуева Н. И. Кедр сибирский на северо-востоке Европейской части СССР. Л.: Наука, 1974.-184 с.

Орехова Т. П. Семена сосны корейской (Pinus koraiensis Sieb et Zucc.): (биологическая характеристика, биохимический состав, рекомендации по сборке и длительному хранению). Владивосток: 2004.-63 с.

Орешкова Н. В., Ларионова А. Я. Внутривидовая дифференциация лиственницы Гмелина // Вестник Томского государственного университета. Приложение (Доклады III Международной конференции « Проблема вида и видообразования», Томск, ТГУ, 20-22 октября 2004 г.).-2004.-Т. 10.-С. 82-85.

Падутов В. Е. Генетические ресурсы и таксономические взаимоотношения основных хвойных видов Восточной Европы, Сибири и прилегающих регионов (на примере родов Picea и Pinus). Автореф. дисс. докт. биол. наук. Минск: Институт генетики и цитологии HAH Беларуси, 2002.-38 с.

Пирко H. М. Популяционно-генетическая изменчивость пихты белой (Abies alba Mill.) в Украинских Карпатах. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Киев: Ин-т клеточной биологии и генетической инженерии НАНУ, 2005.-20 с.

Пирко Я. В. Генетическая изменчивость сосны кедровой европейской Pinns cembra L. в природной популяции Украинских Карпат // Проблеми фшологи рослин i генетики на рубежг третього тисячолгття. Киев: 1нсгитут ф13Юлогн рослин i генетики HAH Украины, 2000.-С. 105.

Писаренко А. И., Редько Г. И., Мерзленко М. Д. Искусственные леса. Москва: ЮНИФИР, совм. с ВНИИЦлесресурс, 1992.-308 с.

Поварницын В. А. Кедровые леса СССР // Красноярск: Изд. Сиблти, 1944.-С. 220.

Подогас А. В. Генетическая дифференциация рода Pinus по аллозимным локусам. Дисс. канд. биол. наук. Москва: Институт общей генетики им. Н. И. Вавилова, 1993.-154 с.

Подогас А. В., Шурхал А. В., Семериков А. В., Ракицкая Т. А. Генетическая изменчивость хвои сосны кедровой сибирской (Pinus sibirica Du Tour) II Генетика.-1991.-T. 27.-№4.-C. 695-703.

Политов Д. В. Древесные растения // Алтухов, Ю.П. и др. Динамика популяционных генофондов при антропогенных воздействиях. М.: Наука, 2004.-С. 254-326.

Политов Д. В. Генетика популяций кедровых сосен // Проблемы лесоведения и лесоводства (Институту леса HAH Беларуси — 75 лет): Сборник научных трудов ИЛ HAH Беларуси. Гомель: ИЛ HAH Беларуси, 2005.-С. 178-179.

Политов Д. В., Крутовский К. В. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение V. Анализ системы скрещивания//Генетика.-1990.-Т. 26.-№ 11.-С. 1309-1316.

Политов Д. В., Крутовский К. В. Клинальная изменчивость и интрогрессивная гибридизация в популяциях европейской и сибирской елей // Жизнь популяций в гетерогенной среде. Йошкар-Ола: Периодика Марий-Эл, 1998.-С. 78-89.

Политов Д. В., Крутовский К. В., Алтухов Ю. П. Генетическая изменчивость сибирской кедровой сосны Pinus sibirica Du Tour. Сообщение III. Сцепление изоферментных локусов // Генетика.-1989.-Т. 25.-№9.-С. 1606-1618.

Политов Д. В., Крутовский К. В., Алтухов Ю. П. Характеристика генофондов популяций кедровых сосен по совокупности изоферментных локусов // Генетика,-1992.-Т. 28.-№ 1.-С. 93-114.

Попов М. Г. Очерк растительности и флоры Карпат. Москва: Изд-во Московского общества испытателей природы, 1949.-303 с.

Попов П. П. Изменчивость формы семенных чешуй и структура уральских популяций ели сибирской // Лесоведение.- 1980.-Т. 6.-С. 19-25.

Попов П. П. Популяционная структура ели сибирской в зоне интрогрессивной гибридизации с елью европейской // Лесоведение.-1991.-Т. 5.-С. 26-32.

Попов П. П. Влияние интрогрессивной гибридизации елей европейской и сибирской на структуру и дифференциацию популяций // Экология.-1992.-Т. 5.-С. 10-17.

Попов П. П. Географическая изменчивость формы семенных чешуй ели в Восточной Европе и Западной Сибири // Лесоведение,-1999а.-Т. 1.-С. 68-73.

Попов П. П. Ель на востоке Европы и в Западной Сибири (популяционно-географическая изменчивость и ее лесоводственное значение). Новосибирск: Наука, 1999Ь.-169 с.

Попов П. П. Ель европейская и сибирская. Новосибирск: Наука, 2005.-231 с.

Потенко В. В., Беликов А. В. Генетическая изменчивость и дифференциация природных популяций корейской кедровой сосны на российском Дальнем Востоке//Лесоведение.-1999.-Т. 4.-С. 10-15.

Потенко В. В., Беликов А. В. Генетическая изменчивость и система скрещивания Pinus koraiensis Sieb, et Zucc // Лесоведение.-2002.-Т. 4.-C. 44-52.

Правдин Л. Ф. Ель европейская и ель сибирская в СССР. М.: Наука, 1975.-176 с.

Развитие природной среды в плейстоцене. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1981.-

Райт Д. В. Введение в лесную генетику. М.: Лесная промышленность, 1978.-470 с.

Санников С. Н., Петрова И. В. Дифференциация популяций сосны обыкновенной. Екатеринбург: УрО РАН, 2003.-248 с.

Семериков В. Л., Шурхал А. В., Подогас А. В., Ракицкая Т. А. Электрофоретическая изменчивость белков хвои сосны обыкновенной Pinus sylvestris L. // Генетика.-1991.-Т. 27.-№ 9.-С. 1590-1596.

Семечкин И. В., Поликарпов Н. И., Ирошников А. И., и. др. Кедровые леса Сибири. Новосибирск: Наука, 1985.-258 с.

Скупченко Л. А. Кариотип ели сибирской на севере Коми АССР // Лесоведение.-1975.-Т. 5.-С. 70-74.

Восточноевропейские леса: История в голоцене и современность. Т. 1. (под М.: Наука, 2004.-479 с.

Смолоногов Е. П. Эколого-географическая дифференциация и динамика кедровых лесов Урала и Западно-Сибирской равнины. Свердловск: Наука. Уральское отделение, 1990.-288 с.

Созинов А. А. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции. М.: Наука, 1985.-272 с.

Сочава В. Б. Проблемы физической географии и геоботаники. Избранные труды. Новосибирск: 1986.-344 с.

Страхов В. В., Писаренко А. И., Борисов В. А. Глобализация лесного хозяйства. Москва: ВНИИЦлесресурс, 2001.-400 с.

Сукачёв В. Н. Дендрология с основами лесной геоботаники. М.- Л.: Гослестехиздат, 1938.-574 с.

Тахтаджян А. Л. Подкласс хвойные или пиниды (Ршёае). Общая характеристика // (под. ред.: А. А. Федоров) Жизнь растений. М.: Просвещение, 1978.-С. 317-335.

Тимерьянов А. Ш., Шигапов 3. X., Янбаев Ю. А. Генетическая изменчивость лиственницы Сукачева (Ьапх яикасгеми БуЬ) на Южном Урале // Генетика. -1994.-Т. 30.-№ 9.-С. 1243-1247.

Титов Е. В. Опыт скрещивания кедра сибирского с другими соснами в условиях северо-восточного Алтая // Лесоведение.-1977.-Т. 4.-№ 81-87.

Титов Е. В. Межвидовая гибридизация кедровых сосен // (под. ред.: А. П. Царев) Гибридизация лесных древесных пород. Воронеж: Гос. ком. СССР по лесу, ЦНИИЛГиС, 1988.-С. 76-84.

Тихомиров Б. А. Кедровый стланик, его биология и использование. Москва: Изд-во Московского общества испытателей природы, 1949.-106 с.

Толмачев А. И. К истории возникновения и развития темнохвойной тайги. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1954.-155 с.

Третьякова И. Н. Нормальное и аномальное развитие макрогаметофита, опыление и эмбриогенез кедра сибирского // (под. ред.: Л. И. Милютин) Подукгивность лесов. Новосибирск: Наука, 1982.-С. 45-59.

Третьякова И. Н. Эмбриология хвойных. Физиологические аспекты. Новосибирск: Наука, сбирское отделение, 1990.-157 с.

Тюлина Л. Н. Растительность южной части Баргузинского хребта. Новосибирск: Наука, СО, 1981.-85 с.

Удра И. Ф. Расселение растений и вопросы палео- и биогеографии. Киев: Наукова Думка, 1988.-198 с.

Урусов В. М. География хвойных Дальнего Востока. Владивосток: Дальнаука, 1995.-251 с.

Жизнь растений. Т. 4. Мхи, плауны, хвощи, папоротники, голосеменные растения. (подМ.: Просвещение, 1978.-448 с.

Филипчук А. Н., Борисов В. А. Глобальная оценка лесных ресурсов Земли. М.: ВНИИЦЛесресурс, 1998.-32 с.

Хоментовский П. А. Экология кедрового стланика на Камчатке. Владивосток: Дальнаука, 1995.-227 с.

Шварц С. С. Экологические закономерности эволюции. М.: Наука, 1980.-277 с.

Шершукова О. П. Кариотип ели аянской // Лесоведение.-1976.-Т. 2.-С. 58-64.

Шершукова О. П. Кариотип ели сибирской Picea obovata Ledeb. популяции Алтая // Научные основы селекции хвойных древесных пород. М.: 1978.-С. 8286.

Шимак М. Полиэмбриональные семена в арктических областях // Половая репродукция хвойных. Материалы I Всесоюзного симпозиума. Новосибирск: Наука, Сибирское отд-е, 1973.-С. 83-95.

Шурхал А. В., Подогас А. В., Животовский Л. А. Генетическая дифференциация 18 видов сосен по аллозимным локусам: род Pinus, подрод Sirobus, подрод Pinus //Доклады АН СССР.-1991.-Т. 316.-№484-488.

Шурхал А. В., Подогас А. В., Животовский Л. А. Уровни генетической дифференциации жестких сосен, род Pinus, подрод Pinus, по данным аллозимной изменчивости//Генетика.-1993.-Т. 29.-№ 1.-С. 77-90.

Янбаев Ю. А., Шигапов 3. X., Путенихин В. П., Бахтиярова Р. М. Дифференциация популяций ели сибирской (Picea obovata Ledeb.) на Южном Урале//Генетика.-1997.-Т. 33.-№9.-С. 1244-1249.

Aagaard J. Е., Krutovskii К. V., Strauss S. Н. RAPD markers of mitochondrial origin exhibit lower population diversity and higher differentiation than RAPDs of nuclear origin in Douglas fir // Molecular Ecology.-1998.-V. 7.-№ 7. -P. 801-812.

Adams W. Т., Joly R. J. Genetics of allozyme variants in loblolly pine // Journal of Heredity.-1980a.-V. 71.-№ 33-40.

Adams W. Т., Joly R. J. Linkage relationships among twelve allozyme loci in loblolly pine //Journal of Heredity.-1980b.-V. 71.-№ 179-202.

Adams W. Т., Neale D. В., Doerksen A. H., Smith D. B. Inheritance and linkage of isozyme variants from seed and vegetative bud tissues in coastal Douglas-fir [Pseudotsuga menziesii var. menziesii (Mirb.) Franco] // Silvae Genetica.-1990.-V. 39.-№ 3/4. -P. 153-167.

Aebersold P. В., Winans G. A., Teel D. J., Milner G. В., Utter F. M. Manual for starch gel electrophoresis: A method for the detection of genetic variation. US Department of Commerce. NOAA Technical Report NMFS 61, 1987.-19 p.

Agee J. K. Fire and pine ecosystems // (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge, UK: Cambridge University Press,-1998.-P. 193218.

Ahuja M. R. Recent advances in molecular genetics of forest trees // Euphytica.-2001.-V. 121.-№ 2. -P. 173-195.

Ahuja M. R. Polyploidy in gymnosperms: Revisited // Silvae Genetica.-2005.-V. 54.-№ 2. -P. 59-69.

Ahuja M. R., Neale D. B. Origins of polyploidy in coast redwood (Sequoia sempervirens (D. Don) Endl.) and relationship of coast redwood to other genera of Taxodiaceae // Silvae Genetica.-2002.-V. 51.-№ 2-3. -P. 93-100.

Alden B. Taxonomy and geography of the Genus Picea II International Dendrology Society Year Book. Hunstanton, Norfolk-London: Witley Press Ltd.,-1986.-P. 85-96.

Alexandrov A. H., Dobrev R., Tsakov H. Genetic and conservation research on Pinus peuce in Bulgaria // (ed. by R. A. Sniezko, S. Samman, S. E. Schlarbaum, H. B. Kriebel) Breeding and genetic resources of five-needle pines: growth, adaptability and pest resistance; 2001 July 23-27; Medford, OR, USA. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station,-2004.-P. 61-63.

Allendorf F. W., Knudsen K. L., Blake G. M. Frequencies of null alleles et enzyme loci in natural populations of ponderosa and red pine // Genetics.-1982.-V. 100.-№ 3. -P. 497-504.

Altukhov Y. P. The role of balancing selection and overdominance in maintaining allozyme polymorphism//Genetica.-1991.-V. 85.-№ 1. -P. 79-90.

Andresen J. W., Steinhoff R. J. The taxonomy of Pinus flexilis and P. strobiformis II Phytologia.-1971.-V. 22.-№ 57-70.

Arcade A., Anselin F., Rampant P. F., Lesage M. C., Paques L. E., Prat D. Application of AFLP, RAPD and ISSR markers to genetic mapping of European and Japanese larch // Theoretical and Applied Genetics.-2000.-V. 100.-№ 2. -P. 299-307.

Bakshi M. Allozyme variation in natural population of Blue pine (Population structure, genetic variatuion and differentiation in Pinus wallichiana II (ed. by S. S. Negi, D. K. Srivastava, S. Nautiyal) Studies on Himalayan pines. Dehra Dun, India: Forest Research Institute,-2006.-P. 80-91.

Bartels H. Genetic control of multiple esterases from needles and macro-gametophytes of Picea abies II Planta.-1971a.-V. 99.-№ 283-289.

Bartels H. Isoenzymes and their significance for forest tree breeding and genetics // Allgemeine Forstzeitschrifl.-1971b.-V. 3.-№ 50-52.

Beaulieu J., Simon J. P. Genetic structure and variability in Pinus strobus in Quebec // Canadian Journal of Forest Research.-1994.-V. 24.-№ 8. -P. 1726-1733.

Beaulieu J., Simon J. P. Mating system in natural populations of eastern white pine in Quebec // Canadian Journal of Forest Research.-1995.-V. 25.-№ 10. -P. 1697-1703.

Belletti P., Gullace S. Genetic variation and structure among Swiss stone pine (Pinus cembra) and Scots pine (Pinus sylvestris) populations in the western Italian Alps // Sherwood — Foreste ed Alberi Oggi.-1999.-V. 5.-№ 4. -P. 11-16.

Belletti P., Lanteri S. Allozyme variation among European beech (Fagus sylvatica L.) stands in Piedmont, north-western Italy // Silvae Genetica.-1996.-V. 45.-№ 1. -P. 3337.

Bergmann F. Genetische Untersuchungen bei Picea abies mit Hilfe des IsoenzymIdentifizierung. 1. Möglichkeiten fur genetische Zertifizierung von Forstsaatgut II Allgemeine Forst- und Jagdzeitung.-1971.-V. 142.-№ 11. -P. 278-280.

Bergmann F. Genetic investigations on Picea abies with the aid of iso-enzyme identification. Part III. Geographical variation at 2 esterase and 2 leucine-aminopeptidase loci in the Swedish Spruce populations // Silvae Genetica.-1973.-V. 22.-№ 3. -P. 63-66.

Bergmann F. The genetics of some isoenzyme systems in spruce endosperm (Picea abies) II Genetica.-1974.-V. 6.-№ 3. -P. 353-360.

Bergmann F. Adaptive acid phosphatase polymorphism in conifer seeds // Silvae Genetica.-1975.-V. 24.-№ 5/6. -P. 175-177.

Bergmann F. The allelic distribution at an acid phosphatase locus in Norway Spruce (Picea abies) along similar climatic gradients // Theoretical and Applied Genetics.-1978.-V. 52.-№ 57-64.

Bergmann F., Gregorius H. R. Comparison of the genetic diversities of various populations of Norway Spruce (Picea abies) II Proceedings of the Conference on Biochemical Genetics of Forest Trees (Umea, Sweden, 1978). Uppsala, Sweden: Swedish University of Agricultural Sciences,-1979.-P. 99-107.

Bergmann F., Scholz F. Effects of selection pressure by S02 pollution on genetic structure of Norway Spruce (Picea abies) II Population Genetics in Forestry. Berlin -Heidelberg — New-York — Tokyo: Springer-Verlag,-1985.-P. 267-275.

Bergmann F., Scholz F. The impact of air pollution on the genetic structure of Norway spruce // Silvae Genetica.-1987.-V. 36.-№ 2. -P. 80-83.

Betancourt J. L., Schuster W. S., Mitton J. B., Anderson R. S. Fossil and genetic history of a pinyon pine (Pinus edulis) isolate // Ecology.-199l.-V. 72.-№ 5. -P. 16851697.

Binelli G., Bucci G. A genetic linkage map of Picea abies Karst. based on RAPD markers as a tool in population genetics 11 Theoretical and Applied Genetics.-1994.-V. 88.-№ 3-4. -P. 283-288.

Bingham R. T. Taxonomy, crossability, and relative blister rust resistance of 5-needled white pines // (ed. by R. T. Bingham, R. J. Hoff, G. I. McDonald) Biology of Rust Resistance in Forest Trees. Washington, DC: U.S. Department of Agriculture,-1972.-P. 271-280.

Bingham R. T., Hoff R. J., Steinhoff R. J. Genetics of western white pine. Washington, DC: USDA Forest Service, 1972.-28 p.

Blada I. Juvenile blister rust resistance and height growth of Pinus strobus x P. peuce F1 hybrids // Silvae Genetica.-1989.-V. 38.-№ 2. -P. 45-49.

Blada I. Nuclear and extranuclear genetic effects in F1 reciprocal hybrids between Pinus strobus and P. peuce I I Silvae Genetica.-1992.-V. 41.-№ 1. -P. 34-38.

Blada I. Interspecific hybridization of Swiss stone pine (Pinus cembra L.) // Silvae Genetica.-1994.-V. 43.-№ 1. -P. 14-20.

Blada I. Genetic variation in blister-rust resistance and growth traits in Pinus strobus x P.peuce hybrid at age 17: (Experiment 2) // Silvae Genetica.-2000a.-V. 49.-№ 2. -P. 71-78.

Blada I. Genetic variation in blister rust resistance and growth traits in Pinus strobus x P. peuce hybrid at age 17 (experiment 1) // Forest Genetics.-2000b.-V. 7.-№ 2. -P. 109-120.

Bobola M. S., Eckert R. T„ Klein A. S., Stapelfeldt K., Hillenberg K. A., Gendreau S. B. Hybridization between Picea rubens and Picea mariana: Differences observed

between montane and coastal island populations // Canadian Journal of Forest Research.-1996a.-V. 26.-№ 3. -P. 444-452.

Bobola M. S., Eckert R. Т., Klein A. S., Stapelfeldt K., Smith D. E., Guenette D. Using nuclear and organelle DNA markers to discriminate among Picea rubens, Picea mariana, and their hybrids // Canadian Journal of Forest Research.- 1996b.-V. 26.-№ 3. -p. 433-443.

Bobrov A. V. F. C., Melikian A. P. Systematics of Coniferae // XVI International Botanical Congress (St. Louis, August 1-7,1999). Abstracts. St. Louis: Missouri Botanical Garden,-1999.-P. 340.

Bobrov A. V. F. C., Sorokin A. N. General trends of seed coat evolution in conipherophytes // Тезисы докладов II Международной конференции по анатомии и морфологии растений, Санкт-Петербург, 14-18 октября 2002 г. СПб: 2002.-Р. 201.

Bodenes С., Laigret F., Kermer A. Inheritance and molecular variations of PCR-SSCP fragments in pedunculate oak (Quercus robur L) // Theoretical and Applied Genetics.-1996.-V. 93.-№ 3. -P. 348-354.

Bohlmann J., Meyer-Gauen G., Croteau R. Plant terpenoid synthases: Molecular biology and phylogenetic analysis // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America.-1998.-V. 95.-№ 8. -P. 4126-4133.

Boscherini G., Morgante M., Rossi P., Vendramin G. G., Vicario F. Detection of DNA polymorphisms in Pinus leucodermis Ant. using random amplification // Forest Genetics.-1994.-V. l.-№3. -P. 131-137.

Botstein D., White R. L., Skolnick M., Davis R. L. // Journal of Human Genetics.-1980.-V. 32.-№314.

Boyle Т. В., Morgenstern E. K. Inheritance and linkage relationships of some isozymes of black spruce in New Brunswick // Canadian Journal of Forest Research.-1985.-V. 15.-№ 5. -P. 992-996.

Brown A. D., Barrett S. H., Moran G. F. Mating system estimation in forest trees: Models, methods and meanings // (ed. by H.-R. Gregorius) Population Genetics in

Forestry. Lecture Notes in Biomathematics 60. Berlin — Heidelberg — New-York -Tokyo: Springer-Verlag,-1985.-P. 32-49.

Brown A. D., Weir S. D. Measuring genetic variability in plant populations // Isozymes in Plant Genetics and Breeding. 1983.-P. 219-239.

Brown A. H. D., Burdon J. J., Jarosz A. M. Isozyme analysis of plant mating systems // Isozymes in plant biology. Dioscorides Press; Portland Oregon; USA,-1989.-P. 7386.

Brown G. R., Gill G. P., Kuntz R. J., Langley C. H., Neale D. B. Nucleotide diversity and linkage disequilibrium in loblolly pine // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America.-2004.-V. 101.-№ 42. -P. 15255-15260.

Bruederle L. P., Tomback D. F., Kelly K. K., Hardwick R. C. Population genetic structure in a bird-dispersed pine, Pinus albicaulis (Pinaceae) // Canadian Journal of Botany.-1998.-V. 76.-№ 1. -P. 83-90.

Brunei D., Rodolphe F. Genetic neighborhood structure in a population of Picea abies LII Theoretical and Applied Genetics.-1985.-V. 71.-№ 101-110.

Buchert G. P., Rajora O. P., Hood J. V., Dancik B. P. Effects of harvesting on genetic diversity in old growth eastern white pine in Ontario, Canada // Conservation Biology.-1997.-V. ll.-№3. -P. 747-758.

Bush R. M., Smouse P.E., Ledig F. T. The fitness consequences of multiple-locus heterozygosity: the relationship between heterozygosity and growth rate in pitch pine {Pinus rigida Mill.) // Evolution.-1987.-V. 41.-№ 4. -P. 787-798.

Bush R. M., Smouse P. E. The impact of electrophoretic genotype on life history traits in Pinus taeda II Evolution.-199l.-V. 45.-№ 3. -P. 481-498.

Bush R. M., Smouse P. E. Evidence for the adaptive significance of allozymes in forest trees // New Forests.-1992.-V. 6.-№ 1-4. -P.

Cato S. A., Corbett G. E., Richardson T. E. Evaluation of AFLP for genetic mapping in Pinus radiata D-Don // Molecular Breeding.-1999.-V. 5.-№ 3. -P. 275-281.

Cervera M. T., Remington D., Frigerio J. M., Storme V., Ivens B., Boerjan W., Plomion C. Improved AFLP analysis of tree species // Canadian Journal of Forest

Research-Revue Canadienne De Recherche Forestiere.-2000.-V. 30.-№ 10. -P. 16081616.

Chagne D., Lalanne C., Madur D., Kumar S., Frigerio J. M., Krier C., Decroocq S., Savoure A., Bou-Dagher-Kharrat M., Bertocchi E., Brach J., Plomion C. A high density genetic map of maritime pine based on AFLPs // Annals of Forest Science.-2002.-V. 59.-№ 5-6. -P. 627-636.

Chakraborty R. A note on Nei’s measure of gene diversity in a substructured population // 1974.-V. 21.-№ 85-88.

Chakraborty R., Leimar 0. Genetic variation within a subdivided population // Population Genetics and Fishery Management. 1987.-P. 89-120.

Chamberlain C. J. Gymnosperms: Structure and Evolution. 3rd ed. New York: Dover Publ., 1966.-484 p.

Cheliak W. M., Dancik B. P., Morgan K., Yeh F. C. H., Strobeck C. Temporal variation of the mating system in a natural population of jack pine // Genetics.-1985.-V. 109.-№ 3. -P. 569-584.

Cheliak W. M., Morgan K., Dancik B. P., Strobeck C., Yeh F. C. Segregation of allozymes in megagametophytes of viable seed from a natural population of jack pine Pinus banksiana Lamb. // Theoretical and Applied Genetics.-1984.-V. 69.-№ 145151.

Cheliak W. M., Morgan K., Strobeck C., Yeh F. C., Dancik B. P. Estimation of mating system parameters in plant populations using the EM algorithm // Theoretical and Applied Genetics.-1983.-V. 65.-№ 157-161.

Cheliak W. M., Pitel J. A. Techniques for starch gel electrophoresis of enzymes from forest tree species. Chalk River, Ontario: 1984.-49 p.

Cheliak W. M., Pitel J. A. Inheritance and linkage of allozymes in Larix laricina II Silvae Genetica.-1985.-V. 34.-№4-5. -P. 142-148.

Cheliak W. M., Skroppa T., Pitel J. A. Genetics of the polycross. I. Experimental results from Norway Spruce // Theoretical and Applied Genetics.-1987.-V. 73.-№ 321-329.

Chevalier A. Notes sur les coniferes de l’lndochine // Rev. Int. Bot. Appl. Agric. Trop.-1944.-V. 24.-№ 7-34.

Choi W., Suh G., Yeo J., Tak W. Genetic variation and structure of Korean pine (Pinus koraiensis) among the populations from Manchuria and Korea // Research Report of the Forest Genetics Research Institute (Kyonggido).-1995.-V. No. 31. -P. 30-41.

Clayton J. W., Tretiak D. N. Amino-citrate buffers for pH control in starch gel electrophoresis // Journal of Fisheries Research Board Canada.-1972.-V. 29.-№ 11691172.

Cobb N. S., Mitton J. B., Whitham T. G. Genetic-variation associated with chronic water and nutrient stress in Pinyon pine // American Journal of Botany.-1994.-V. 81.-№ 7. -P. 936-940.

Collignon A. M., Van de Sype H., Favre J. M. Geographical variation in random amplified polymorphic DNA and quantitative traits in Norway spruce // Canadian Journal of Forest Research.-2002.-V. 32.-№ 2. -P. 266-282.

Conkle M. T. Inheritance of alcohol dehydrogenase and leucine aminopeptidase isozymes in knobcone pine // Forest Science.-1971.-V. 17.-№ 2. -P. 190-194.

Conkle M. T. Analyzing genetic diversity in conifers — isozyme resolution by starch gel electrophoresis // USDA Forest Service Research Note.-1972.-V. PSW-264.-№ 15.

Conkle M. T. Isozyme variation and linkage in six conifer species // Proceedings of the Symposium on Isozymes in the North American Forest Trees and Forest Insects (Berkeley, California, 1979). Berkeley, California: Pacific Southwest Forest and Range Experiment Station, USDA Forest Service General Technical Report PSW-48 -1981.-P. 11-17.

Conkle M. T. Genetic diversity — seeing the forest through the trees // New Forests.-1992.-V. 6.-№ 1. -P. 5-22.

Conkle M. T., Hodgskiss P. D., Nunnally L. B., Hunter S. C. Starch gel electrophoresis of conifer seeds: a laboratory manual. USDA Forest Service General

Technical Report PSW-64. Berkeley, California: USFS, Pacific SW. Forest and Range Expt. Sta., 1982.-18 p.

Conkle M. T., Schiller G., Grunwald C. Electrophoretic analysis of diversity and phylogeny of Pinus brutia and closely related taxa // Systematic Botany.-1988.-V. 13.-№3.-P. 411-424.

Copes D. L. Isoenzyme uniformity in western red cedar seedlings from Oregon and Washington // Canadian Journal of Forest Research.-198 l.-V. 11.-№ 2. -P. 451-453.

Costa P., Pot D., Dubos C., Frigerio J. M., Pionneau C., Bodenes C., Bertocchi E., Cervera M. T., Remington D. L., Plomion C. A genetic map of Maritime pine based on AFLP, RAPD and protein markers // Theoretical and Applied Genetics.-2000.-V. 100.-№ 1. -P. 39-48.

Critchfield W. B. Hybridization and classification of the white pines of the section Strobus II Taxon.-1986.-V. 35.-№ 4. -P. 647-656.

Critchfield W. B., Little E. L. Geographic distribution of the pines of the world. Washington, D. C.: U. S. Department of Agriculture Forest Service Miscellaneous Publication 991, 1966.-97 p.

Dallimore W., Jackson A. B. A handbook of Coniferae and Ginkgoaceae / 4th ed. London: 1966.-729 p.

Dancik B. P., Yeh F. C. Allozyme variability and evolution of lodgepole pine (Pinus conforta var. latifolia) and jack pine (P. banksiana) in Alberta // Canadian Journal of Genetics and Cytology.-1983.-V. 25.-№ 1. -P. 57-64.

Danzmann R. G., Buchert G. P. Isozyme variability in central Ontario jack pine (Pinus banksiana) // Proceedings of the 28th Northeastern Forest Tree Improvement Conference. 1983.-P. 232-248.

David A. J., Keathley D. E. Inheritance of mitochondrial DNA in interspecific crosses of Picea glauca and Picea omorika II Canadian Journal of Forest Research.-1996.-V. 26.-№ 3. -P. 428-432.

de Ferré Y. Validité de l’espèce Pinus pumila et affinités systématique II Bulletin de la Société d’Histoire Naturelle de Toulouse.-1966,-V. 102.-№ 2-3. -P. 351-356.

Delgado P., Pinero D., Chaos A., Perez-Nasser N., Alvarez-Buylla E. R. High population differentiation and genetic variation in the endangered Mexican pine Pinus rzedowskii (Pinaceae) // American Journal of Botany.-1999.-V. 86.-№ 5. -P. 669-676.

Dempster A. P., Laird N. M., Rubin D. B. Maximum likelihood from incomplete data via the EM algorithm // Journal of Royal Statistical Society.-1977.-V. SerB39.-№ 1. -P. 1-38.

Deverno L. L., Charest P. J., Bonen L. Inheritance of mitochondrial DNA in the conifer Larix II Theoretical and Applied Genetics.-1993.-V. 86.-№ 2-3. -P. 383-388.

DeVerno L. L., Mosseler A. Genetic variation in red pine (Pinus resinosa) revealed by RAPB and RAPD-RFLP analysis // Canadian Journal of Forest Research.-1997.-V. 27.-№ 8. -P. 1316-1320.

Dietrich A. G. Flora der Gegend um Berlin. Berlin: G.E.Nauck, 1824.-

Dogra P. D. Seed sterility and disturbances in embryogeny in conifers with particular reference to seed testing and tree breeding in Pinaceae // Stud For Sue (Studia Forestalia Suecica?).-1967.-V. 45.-№ 96.

Dorman K. W. The Genetics and Breeding of Southern Pines. 1976.-407 p.

Doyle J. Aspects and problems of conifer embryology // Advan Sci.-1957.-V. 14.-№ 54. -P. 120-130.

Dunlap J. M., Stettler R. F. Genetic variation and productivity of Populus trichocarpa and its hybrids. X. Trait correlations in young black cottonwood from four river valleys in Washington//Trees-Structure and Function.-1998.-V. 13.-№ 1. -P. 28-39.

Echt C. S., MayMarquardt P. Survey of microsatellite DNA in pine // Genome.-1997.-V. 40.-№ l.-P. 9-17.

Echt C. S., MayMarquardt P., Hseih M., Zahorchak R. Characterization of microsatellite markers in eastern white pine // Genome.-1996.-V. 39.-№ 6. -P. 11021108.

Echt C. S., Vendramin G. G., Nelson C. D., Marquardt P. Microsatellite DNA as shared genetic markers among conifer species // Canadian Journal of Forest Research-Revue Canadienne De Recherche Forestiere.-1999.-V. 29.-№ 3. -P. 365-371.

Eckert R. T., Joly R. J., Neale D. B. Genetics of isozyme variants and linkage relationships among allozyme loci in 35 eastern white pine clones // Canadian Journal of Forest Research.-198 l.-V. 11.-№ 573-579.

El-Kassaby Y. A. Genetic variation within and among conifer populations: review and evaluation of methods // (ed. by S. Fineschi, M. E. Malvolti, F. Cannata, H. H. Hattemer) Biochemical Markers in the Population Genetics of Forest Trees (Proceedings of the International Workshop, Porano-Orvieto, Italy, October 1988). The Hague: SPB Academic Publishing B. V.,-1991.-P. 59-74.

El-Kassaby Y. A., Meagher M. D., Parkinson J., Portlock F. T. Allozyme inheritance, heterozygosity and outcrossing rate among Pinus montícola near Ladysmith, British Columbia // Heredity.-1987.-V. 58.-№ 2. -P.

El-Kassaby Y. A., Ritland K., Fashler A. K., Devitt W. B. The role of reproductive phenology upon the mating system of a Douglas-fir seed orchard // Silvae Genetica.-1988.-V. 37.-№ 2. -P. 76-82.

El-Kassaby Y. A., Sziklai 0., Yeh F. C. Linkage relationships among 19 polymorphic allozyme loci in coastal Douglas-fir (Pseudotsuga menziesii var. menziesii) // Canadian Journal of Genetics and Cytology.-1982.-V. 24.-№ 101-108.

Emebiri L. C., Devey M. E., Matheson A. C., Slee M. U. Linkage of RAPD markers to NESTUR, a stem growth index in radiata pine seedlings // Theoretical and Applied Genetics.-1997.-V. 95.-№ 1-2. -P. 119-124.

Engelmann G. Revision of the genus Pinus and description of Pinus elliotii II Trans. St.-Louis Acad. Sci.-1880.-V. 4.-№ 1. -P. 161-189.

Epperson B. K., Allard R. W. Allozyme analysis of the mating system in lodgepole pine populations // Journal of Heredity.-1984.-V. 75.-№ 212-214.

FAO (Ed.). Forest Resources Assessment 1990. Tropical Countries. FAO Forestry Paper 112. Rome, Italy: FAO, 1993.-101 p.

Farjon A. Pines: Drawings and descriptions of the genus Pinus. Leiden: Brill, Backhuys, 1984.-220 p.

Farjon A. Pinaceae: Drawings and descriptions of the genera. Konigstein, Germany: Koelzt, 1990.-330 p.

Felsenstein J. PHYLIP — Phylogeny Inference Package (Version 3.2) // Cladistics -1989.-V. 5.-№ 164-166.

Feret P. P. Isoenzyme variation in Picea glauca (Moench) Voss seedlings // Silvae Genetica.-1971.-V. 20.-№ 46-50.

Florin R. Evolution in Cordaites and Conifers // Acta Horti Bergiani.-1951.-V. 15.-№ 11.-P. 285-388.

Fowler D. P., Morris R. W. Genetic diversity in red pine: evidence for low genie heterozygosity // Canadian Journal of Forest Research.-1977.-V. 7.-№ 343-347.

Furnier G. R., Adams W. T. Geographic patterns of allozyme variation in Jeffrey pine //American Journal of Botany.-1986,-V. 73.-№ 7. -P. 1009-1015.

Furnier G. R., Knowles P., Aleksiuk M. A., Dancik B. P. Inheritance and linkage of allozymes in seed tissue of whitebark pine // Canadian Journal of Genetics and Cytology.-1986.-V. 28.-№ 4. -P. 601-604.

Furnier G. R., Knowles P., Clyde M. A., Dancik B. P. Effects of avian seed dispersal on the genetic structure of whitebark pine populations // Evolution.-1987.-V. 41.-№ 3. -P. 607-612.

Gaussen H. Les gymnospermes actuelles et fossiles. Fasc. VIII, chap. XI. Pseudolarix, Keteleeria, Larix, Pseudotsuga, Pityites, Picea, Caîhaya, Tsuga II Trav. Labor. Forest de Toulouse.-1966.-V. 481-672.

Geburek T. Genetic diversity in forest trees — its importance and potential genetic impact // (ed. by T. Geburek, J. Turok) Conservation and Management of Forest Genetic Resources in Europe. Zvolen, Slovakia: Arbora Publishers,-2005.-P. 437-464.

Geburek T., Turok J. (Ed.). Conservation and Management of Forest Genetic Resources in Europe. Zvolen, Slovakia: Arbora Publishers, 2005.-693 p.

Geburek T., von Wuehlisch G. V. Linkage analysis of isozyme gene loci in Picea abies (L.) Karst // Heredity.-1989.-V. 62.-№ 185-191.

Gernandt D. S., Lopez G. G., Garcia S. 0., Liston A. Phylogeny and classification of Pinus II Taxon.-2005.-V. 54.-№ 1. -P. 29-42.

Glaubitz J. C., El-Kassaby Y. A., Carlson J. E. Nuclear restriction fragment length polymorphism analysis of genetic diversity in western redcedar // Canadian Journal of Forest Research.-2000.-V. 30.-№ 3. -P. 379-389.

Gomory G. Microtechnical demonstration of phosphatase in tissue sections // Proc. Soc. Exp. Biol. Med.-1939.-V. 42.-№ 23.

Gomory D. Mixed-mating model in plant populations with consanguineous matings -what does it really estimate? // Biologia.-2002.-V. 57.-№ 1. -P. 37-43.

Goncharenko G. G., Krivko V. G. Analysis of linkage of some allozyme loci in Norway spruce // Doklady Akademii Nauk.-1993.-V. 328.-№ 1. -P. 105-108.

Goncharenko G. G., Padutov V. E., Silin A. E. Allozyme variation in natural populations of Eurasian pines. II. Genetic variation, diversity, differentiation, and gene flow in Pinus sibirica Du Tour in some lowland and mountain populations // Silvae Genetica.-1993.-V. 42.-№4-5. -P. 246-258.

Gonzalez-Martinez S. C., Krutovsky K. V., Neale D. B. Forest tree population genomics and adaptive evolution // New Phytologist.-2006.-V. 170.-№ 2. -P. 227-238.

Gorchakovsky P. L. Distribution and ecology of Siberian stone pine in the Urals // (ed. by W. C. Schmidt, F.-K. Holtmeier) Proceedings — International workshop on subalpine stone pines and their environment: The status of our knowledge. Ogden, Utah: USDA Forest Service Intermountain Research Station, General Technical Report INT-GTR-309,-1994.-P. 56-60.

Goto S., Miyahara F., Ide Y. Monitoring male reproductive success in a Japanese black pine clonal seed orchard with RAPD markers // Canadian Journal of Forest Research.-2002.-V. 32.-№ 6. -P. 983-988.

Goulao L., Cabrita L., Oliveira C. M., Leitao J. M. Comparing RAPD and AFLP (TM) analysis in discrimination and estimation of genetic similarities among apple (Malus domestica Borkh.) cultivars — RAPD and AFLP analysis of apples // Euphytica.-2001.-V. 119.-№ 3. -P. 259-270.

Graham R. T. Western white pine // Sylvics of North America. SPFO http://na.fs.fed.us/spfo/pubs/silvicsinanual/Volume 1/pinus/lambertiana.htm,-2004.-P. 1-22.

Green A. G., Brown A. D., Oram R. N. Determination of outcrossing rate in a breeding population of Lupinus albus L. (white lupin) // Z.Pflanzenzuchtung.-1980.-V. 84.-№ 181-191.

Gregorius H. R. The attribution of phenotypic variation to genetic or environmental variation in ecological studies // (ed. by F. Scholz, H. R. Gregorius, D. Rudin) Genetic Effects of Air Pollutants in Forest Tree Populations. Proceedings of the Joint Meeting of the IUFRO Working Parties. Berlin — Heidelberg: Springer Verlag,-1989.-P. 3-15.

Gromtsev A. Natural disturbance dynamics in the boreal forests of European Russia: A review// Silva Fennica.-2002.-V. 36.-№ 1. -P. 41-55.

Gugerli F., Senn J., Anzidei M., Madaghiele A., Buchler U., Sperisen C., Vendramin G. G. Chloroplast microsatellites and mitochondrial nadl intron 2 sequences indicate congruent phylogenetic relationships among Swiss stone pine (Pinus cembra), Siberian stone pine (Pinus sibirica), and Siberian dwarf pine (Pinus pumila) // Molecular Ecology.-200l.-V. 10,-№6.-P. 1489-1497.

Guries R. P., Friedmann S. T., Ledig F. T. A megagametophyte analysis of genetic linkage in pitch pine (Pinus rigida Mill.) // Heredity.-1978.-V. 40.-№ 2. -P. 309-314.

Guries R. P., Ledig F. T. Genetic diversity and population structure in pitch pine (Pinus rigida Mill.) // Evolution.-1982.-V. 36.-№ 2. -P. 387-402.

Hamrick J. C., Loveless M. D. The genetic structure of tropical tree populations: association with reproductive biology // The Evolutionary Ecology of Plants. 1989a.-P. 129-146.

Hamrick J. L. Genetic variation and longevity // (ed. by O. Solbrig, S. Jain, G. Johnson, P. Raven) Topics in Plant Population Biology. New York: Columbia University Press,-1979.-P. 85-113.

Hamrick J. L. The distribution of genetic variation within and among natural plant populations // Genetics and Wild Population Management.-1983.-V. 335-348.

Hamrick J. L. Gene flow and distribution of genetic variation in plant populations // (ed. by K. Urbanska) Differentiation Patterns in Higher Plants. London: Acadenic Press,-1987.-P. 53-67.

Hamrick J. L., Godt M. J. Effects of life history traits on genetic diversity in plant species // Philosophical Transactions of the Royal Society London, Series B.-1996a.-V. 351.-№ 1291-1298.

Hamrick J. L., Godt M. J., Sherman-Broyles S. L. Factors influencing levels of genetic diversity in woody plant species // New Forests.-1992.-V. 6.-№ 1-4. -P. 95124.

Hamrick J. L., Godt M. J. W. Effects of life history traits on genetic diversity in plant species // Philosophical Transactions of the Royal Society of London Series B-Biological Sciences.-1996b.-V. 351.-№ 1345. -P. 1291-1298.

Hamrick J. L., Godt M. W., Murawski D. A., Loveless M. D. Correlations between species traits and allozyme diversity: implications for conservation biology // (ed. by D. A. Falk, K. E. Holsinger) Genetics and Conservation of Rare Plants. New York: Oxford University Press,-1991.-P. 75-86.

Hamrick J. L., Linhart Y. B., Mitton J. B. Relationships between life history characteristics and electrophoretically detectable genetic variation in plants // Annual Revue of Ecology and Systematics.-1979.-V. 10.-№ 173-200.

Hamrick J. L., Loveless M. D. The influence of seed dispersal mechanisms on the genetic structure of plant populations // Frugivores and Seed Dispersal. 1986.-P. 211223.

Hamrick J. L., Loveless M. D. The genetic structure of tropical tree populations: associations with reproductive biology // (ed. by J. E. Bock, Y. B. Linhart) The Evolutionary Ecology of Plants. Boulder, San Francisco, & London: Wstview Press,-1989b.-P. 129-146.

Hamrick J. L., Mitton J. B., Linhart Y. B. Levels of genetic variation in trees: influence of life history characteristics // Proceedings of the Symposium on Isozymes in the North American Forest Trees and Forest Insects (Berkeley, California, July 1979). Berkeley, California: USD A Forest Service, Pacific Southwest Forest and Range Experiment Station. General Technical Report PSW-48,-1981.-P. 35-41.

Hamrick J. L., Murawski D. A. Levels of allozyme diversity in populations of uncommon Neotropical tree species // Journal of Tropical Ecology.-199l.-V. 7.-№ 395-399.

Hamrick J. L., Murawski D. A., Nason J. D. The influence of seed dispersal mechanisms on the genetic structure of tropical tree populations // Vegetatio.-1993.-V. 108.-№ 281-297.

Hamrick J. L., Schnabel A. Understanding the genetic structure of plant populations: some old problems and a new approach // Population Genetics in Forestry. Berlin -Heidelberg — New-York — Tokyo: Springer-Verlag,-1985.-P. 50-70.

Hamrick J. L., Schnabel A., Wells P. V. Distribution of genetic diversity within and among populations of Great Basin conifers // (ed. by K. T. Harper, L. L. StClair, K. H. Thorne, W. M. Hess) Natural History of the Colorado Plateau and Great Basin. Niwot, Colorado: University Press of Colorado,-1994.-P. 147-161.

Harry D. E. Inheritance and linkage of isozyme variants in incense-cedar // Journal of Heredity.-1986.-V. 77.-№ 261-266.

Hayashi K. PCR-SSCP: a simple and sensitive method for detection of mutations in the genomic DNA // PCR Methods and Applications.-1991.-V. l.-№ 34-38.

Hayashida M. Seed dispersal by red squirrels and subsequent establishment of Korean pine // Forest Ecology and Management.-1989.-V. 28.-№ 115-129.

Hedrick P. W. Genetics of Populations. Boston: Jones and Barlett, 2000.-

Heinze B., Westcott R., Schmidt J., Glossl J. Application of random amplified polymorphic DIVA (RAPD) to detect genetic variation in Norway spruce // New Forests.-1996.-V. ll.-№2. -P. 173-184.

Hiebert R. D., Hamrick J. L. Patterns and levels of genetic variation in Great Basin bristlecone pine, Pinus longaeva II Evolution.-1983.-V. 37.-№ 2. -P. 302-310.

Hipkins V. D., Krutovskii K. V., Strauss S. H. Organelle genomes in conifers: structure, evolution and diversity // Forest Genetics.-1994.-V. l.-№ 4. -P. 179-189.

Holzer K. Genetics of Pinus cembra L // Annales Forestales (Zagreb).-1975.-V. VI/5.-№ 139-158.

Hummer K. E. History of the origin and dispersal of white pine blister rust // HortTechnology.-2000.-V. 10.-№3. -P. 515-517.

Hunter R. L., Markert C. L. Histochemical demonstration of enzymes separated by zone elecrtrophoresis in starch gels // Science.-1957.-V. 125.-№ 1294-1295.

Huntley B., Webb III T. (Ed.). Vegetation History. Dordrecht: Kluwer Acedemic Publischers, 1988.-

Ickert-Bond S. M. Cuticle micromorphology of Pinus krempfii Lecomte (Pinaceae) and additional species from southeast Asia // International Journal of Plant Sciences.-2000.-V. 161.-№2. -P. 301-317.

Ickert-Bond S. M. Reexamination of wood anatomical features in Pinus krempfii (Pinaceae) // Iawa Journal.-2001.-V. 22.-№ 4. -P. 355-365.

Imbs A. B., Pham L. Q. Fatty acids and triacylglycerols in seeds of Pinaceae species // Phytochemistry.-1996.-V. 42.-№4. -P. 1051-1053.

Isoda K., Shiraishi S., Watanabe S., Kitamura K. Molecular evidence of natural hybridization between Abies veitchii and A-homplepis (Pinaceae) revealed by chloroplast, mitochondrial and nuclear DNA markers // Molecular Ecology.-2000.-V. 9.-№ 12. -P. 1965-1974.

Jansson G. Quantitative genetics // (ed. by T. Geburek, J. Turok) Conservation and Management of Forest Genetic Resources in Europe. Zvolen, Slovakia: Arbora Publishers,-2005.-P. 213-236.

Jeffrey E. C. On the structure of the leaf in Cretaceaous pines // Ann. Bot. (London).-1908.-V. 22.-№ 207-220.

Jermstad K. D., Reem A. M., Henifin J. R., Wheeler N. C., Neale D. B. Inheritance of Restriction-Fragment-Length-Polymorphisms and Random Amplified Polymorphic Dnas in Coastal Douglas-Fir // Theoretical and Applied Genetics.-1994.-V. 89.-№ 6. -P. 758-766.

Johansen A. D., Latta R. G. Mitochondrial haplotype distribution, seed dispersal and patterns of postglacial expansion of ponderosa pine // Molecular Ecology.-2003.-V. 12.-№ 1. -P. 293-298.

Jorgensen S. M., Hamrick J. L. Biogeography and population genetics of whitebark pine, Pinus albicaulis II Canadian Journal of Forest Research-Revue Canadienne De Recherche Forestiere.-1997.-V. 27.-№ 10. -P. 1574-1585.

Kanetani S.-I., Kawahara T., Kanazashi A., Yoshimaru H. Diversity and conservation of genetic resources of an endangered five-needle pine species, Pinus armandii Franch. var. amamiana (Koidz.) Hatusima // (ed. by R. A. Sniezko, S. Samman, S. E. Schlarbaum, H. B. Kriebel) Breeding and genetic resources of five-needle pines: growth, adaptability and pest resistance; 2001 July 23-27; Medford, OR, USA. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station,-2004.-P. 188-191.

Kapoor K. S., Kumar S., Rajasekaran A., Rawat R. S. Chilgoza (Pinus gerardiana Wall.) a unique conifer of inner dry valleys of North-West Himalayas // (ed. by S. S. Negi, D. K. Srivastava, S. Nautiyal) Studies on Himalayan pines. Dehra Dun: Forest Research Institute,-2006.-P. 158-169.

Kephart S. R. Starch gel electrophoresis of plant isozymes: a comparative study of techniques //American Journal of Botany.-1990.-V. 77.-№ 5. -P. 693-712.

Kim Z.-S., Lee S.-W., Lim J.-H., Hwang J.-W., Kwon K.-W. Genetic diversity and structure of natural populations of Pinus koraiensis (Sieb. et Zucc.) in Korea // Forest Genetics.-1994.-V. l.-№ 1. -P. 41-49.

Kim Z. S., Hwang J. W., Lee S. W., Yang C., Gorovoy P. G. Genetic variation of Korean pine (Pinus koraiensis Sieb. et Zucc.) at allozyme and RAPD markers in Korea, China and Russia II Silvae Genetica.-2005.-V. 54.-№ 4-5. -P. 235-246.

Kimura M. The Neutral Theory Of Molecular Evolution. Cambridge: Cambridge University Press, 1983.-

Kimura M., Ohta T. Theoretical Aspects of Population Genetics. Princeton: Princeton University Press, 1971.-

King J. N., Dancik B. P. Inheritance and linkage of isozymes in white spruce (Picea glauca) // Canadian Journal of Genetics and Cytology.-1983.-V. 25.-№ 430-436.

King J. N., Dancik B. P., Dhir N. K. Genetic structure and mating system in white spruce (Picea glauca) in a seed production area // Canadian Journal of Forest Research.-1984.-V. 14.-№ 639-643.

Kinloch B. B., Scheuner W. H. Sugar pine // Sylvics of North America. Vol. 1. SPFO http://na.fs.fed.us/spfo/pubs/silvicsmanua1/Vo1umel/pinus/lambertiana.htm.-1990.-P. 1-21.

Kitzmiller J. H. Adaptive genetic variation in sugar pine // (ed. by R. A. Sniezko, S. Samman, S. E. Schlarbaum, H. B. Kriebel) Breeding and genetic resources of five-needle pines: growth, adaptability and pest resistance; 2001 July 23-27; Medford, OR, USA. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station,-2004.-P. 103-123.

Klaus W. Mediterranean pines and their history // Plant Systematics and Evolution.-1980.-V. 162.-№ 133-163.

Klumpp R. T., Stefsky M. Phylogenetics, genogeography and hybridization of 5-needle pines in Russia and neighboring countries // (ed. by R. A. Sniezko, S. Samman, S. E. Schlarbaum, H. B. Kriebel) Breeding and genetic resources of five-needle pines: growth, adaptability and pest resistance; 2001 July 23-27; Medford, OR, USA. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station,-2004.-P. 136-140.

Knowles P. Genetic variability among and within closely spaced populations of lodgepole pine // Canadian Journal of Genetics and Cytology.-1984.-V. 26.-№ 2. -P. 177-184.

Knowles P., Furnier G. R., Aleksiuk M. A., Perry D. J. Significant level of self-fertilization in natural populations of tamarack // Canadian Journal of Botany.-1987.-V. 65.-№ 6. -P. 1087-1091.

Kohn J. A cellulose acetate supporting medium for zone electrophoresis // Clin. Chim. Acta.-1957.-V. 2.-№ 297.

Konnert M., Maurer W. Isozymic investigation on Norway Spruce [Picea abies (L) Karst.] and European Silver Fir [Abies alba Mill.]: Practical guide to separation

methods and zymogram evaluation. Teisendorf: German Federal-State Working Group «Conservation of Forest Gene Resources». 1995.-79 p.

Krakowski J., Aitken S. N., El-Kassaby Y. A. Inbreeding and conservation genetics in whitebark pine // Conservation Genetics.-2003.-V. 4.-№ 5. -P. 581-593.

Krutovskii K. V., Bergmann F. Introgressive hybridization and phylogenetic relationships between Norway, Picea abies (L) Karst, and Siberian, Picea obovata Ledeb, spruce species studied by isozyme loci // Heredity.-1995.-V. 74.-№ 464-480.

Krutovskii K. V., Politov D. V. Allozyme evidence for polyzygotic polyembryony in Siberian stone pine (Pinus sibirica Du Tour) // Theoretical and Applied Genetics.-1995.-V. 90.-№ 6. -P. 811-818.

Krutovskii K. V., Politov D. V., Altukhov Y. P. Study of genetic differentiation and phylogeny of stone pine species using isozyme loci // (ed. by W. C. Schmidt, F.-K. Holtmeier) Proceedings — International workshop on subalpine stone pines and their environment: The status of our knowledge. Ogden, Utah: USDA Forest Service Intermountain Research Station,-1994.-P. 19-30.

Krutovskii K. V., Politov D. V., Altukhov Y. P. Isozyme study of population genetic structure, mating system and phylogenetic relationships of the five stone pine species (subsection Cembrae, section Strobi, subgenus Strobus) // Population genetics and genetic conservation of forest trees. Papers presented at an international symposium organized by IUFRO, held 24-28 August 1992 at Carcans-Maubuisson, France. SPB Academic Publishing; Amsterdam; Netherlands,-1995.-P. 279-304.

Krutovsky K. V., Elsik C. G., Matvienko M., Kozik A., Neale D. B. Identification of candidate genes for Conserved Ortholog Set in forest trees // Tree Genetics and Genomes.-2006.-V. l.-№.

Krutovsky K. V., Neale D. B. Forest genomics and new molecular genetic approaches to measuring and conserving adaptive genetic diversity in forest trees // (ed. by T. Geburek, J. Turok) Conservation and Management of Forest Genetic Resources in Europe. Zvolen: Arbora Publishers,-2005.-P. 369-390.

Krutovsky K. V., Troggio M., Brown G. R., Jermstad K. D., Neale D. B. Comparative mapping in the Pinaceae // Genetics.-2004.-V. 168.-№ 1. -P. 447-461.

Kuittinen H., Muona O., Karkkainen K., Borzan Z. Serbian spruce, a narrow endemic, contains much genetic variation // Canadian Journal of Forest Research.-199l.-V. 21.-№ 3. -P. 363-367.

Lagercrantz U., Ryman N., Stahl G. Protein loci in diploid tissue of Norway spruce (Picea abies K.): description and interpretation of electrophoretic variability patterns // Hereditas.-1988.-V. 108.-№ 149-158.

Lanner R. Seed dispersal in Pinus // (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge, UK: Cambridge University Press,- 1998.-P. 281295.

Lanner R. M. Natural hybridization between Pinus edulis and Pinus monophylla in the American Southwest// Silvae Genetica.-1974.-V. 23.-№ 4. -P. 108-116.

Lanner R. M. Avian seed dispersal as a factor in the ecology and evolution of limber and whitebark pines // Proceedings of 6th North American Forest Biology Workshop (University of Alberta, Edmonton, Canada, August 11-13, 1980). 1980.-P. 15-47.

Lanner R. M. Biology, taxonomy, evolution and geography of stone pines of the world // Proceedings — Symposium on Whitebark Pine Ecosystems: Ecology and Management of a High-Mountain Resource. 1990.-P. 14-24.

Lanner R. M. Made for each other: A symbiosis of birds and pines. New York, Oxford: Oxford University Press, Inc., 1996.-160 p.

Lanner R. M., Phillips A. M. Natural hybridization and introgression of Pinyon pines in northwestern Arizona // International Journal of Plant Sciences.-1992.-V. 153.-№ 2. -P. 250-257.

Latta R. G., Mitton J. B. A comparison of population differentiation across four classes of gene marker in limber pine (Pinus flexilis James) // Genetics.-1997.-V. 146.-№ 3. -P. 1153-1163.

Lavery P. B., Mead D. J. Pinus radiata: a narrow endemic from North America takes on the world // (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge, UK: Cambridge University Press,-1998.-P. 432-449.

Lecomte H. Un pin remarquable de l’Annam, Pinus krempfii II Bull. Mus. Hist. Nat. Paris.-1921.-V. 27.-№ 191-192.

Ledig F. T. Heterozygosity, heterosis and fitness in outbreeding plants // (ed. by M. E. Soule) Conservation Biology: the Science of Scarcity and Diversity. Sunderland, Massachussets: Sinauer Associates,-1986.-P. 77-104.

Ledig F. T. Genetic variation in Pinus // (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge, UK: Cambridge University Press,-1998.-P. 251280.

Ledig F. T., Capo-Arteaga M. A., Hodgskiss P. D., Sbay H., Flores-Lopez C., Conkle M. T., Bermejo-Velazquez B. Genetic diversity and the mating system of a rare Mexican pinon, Pinus pinceana, and a comparison with Pinus maximartinezii (Pinaceae)//American Journal of Botany.-200 l.-V. 88.-№ 11. -P. 1977-1987.

Ledig F. T., Conkle M. T. Gene diversity and genetic structure in a narrow endemic, Torrey pine (Pinus torreyana Parry ex Carr.) // Evolution.-1983.-V. 37.-№ 1. -P. 7985.

Ledig F. T., Conkle M. T., Bermejo-Velazquez B., Eguiluz-Piedra T., Hodgskiss P. D., Johnson D. R., Dvorak W. S. Evidence for an extreme bottleneck in a rare Mexican pinyon: Genetic diversity, disequilibrium, and the mating system in Pinus maximartinezii//Evolution.-1999.-V. 53.-№ 1. -P. 91-99.

Lee S.-W., Ledig F. T., Johnson D. R. Genetic variation at allozyme and RAPD markers in Pinus longaeva (Pinaceae) of the White Mountains, California // American Journal of Botany.-2002.-V. 89.-№4. -P. 566-577.

Lee S. W., Choi W. Y., Norbu L., Pradhan R. Genetic diversity and structure of blue pine (Pinus wallichiana Jackson) in Bhutan // Forest Ecology and Management.-1998.-V. 105.-№ 1-3. -P. 45-53.

Lerceteau E., Plomion C., Andersson B. AFLP mapping and detection of quantitative trait loci (QTLs) for economically important traits in Pinus sylvestris: a preliminary study//Molecular Breeding.-2000.-V. 6.-№ 5. -P. 451-458.

Lerceteau E., Szmidt A. E. Properties of AFLP markers in inheritance and genetic diversity studies of Pinus sylvestris L // Heredity.-1999.-V. 82.-№ 252-260.

Levin D. A. Some genetic consequences of being a plant // (ed. by P. Brussard) Ecological Genetics: the Interface. New York: Springer Verlag,-1978.

Levin D. A. Isolate selection and ecological speciation // Systematic Botany.-2005.-V. 30.-№2. -P. 233-241.

Lewandowski A., Burczyk J. Mating system and genetic diversity in natural populations of European larch (Larix decidua) and stone pine (Pinus cembra) located at higher elevations // Silvae Genetica.-2000.-V. 49.-№ 3. -P. 158-161.

Lewandowski A., Burczyk J., Mejnartowicz L. Genetic structure and the mating system in an old stand of Polish larch // Silvae Genetica.-1991.-V. 40.-№ 2. -P. 75-79.

Lewandowski A., Mejnartowicz L. Detection of close linkage between glutamate and isocitrate dehydrogenase allozyme loci in Picea abies II Hereditas.-1994.-V. 120.-№ 3. -P. 281-282.

Lewontin R. C. The genetic basis of evolutionary change. New York: Columbia University Press, 1974.

Lewontin R. C. Population genetics // Annual Revue of Genetics.-1985.-V. 19.-№ 81102.

Li B., Gu W., Chen X. Allozyme genetic diversity and conservation strategy of ten natural populations of Pinus bungeana Zucc. ex Endl. // Forestry Studies in China.-2003.-V. 5.-№ 4. -P.

Linhart Y. B., Tomback D. F. Seed dispersal by nutcrackers causes multi-trunk growth form in pines // Oecologia.-1985.-V. 67.-№ 107-110.

Linnaeus C. Species plantarum // Stockholm: Impensis Laurentii Salvii,-1753.-P. 1419.

Liston A., Robinson W. A., Pinero D., Alvarez-Buylla E. R. Phylogenetics of Pinus (Pinaceae) based on nuclear ribosomal DNA internal transcribed spacer region sequences//Molecular Phylogenetics and Evolution.-1999.-V. 11.-№ 1. -P. 95-109.

Little E. L., Critchfield W. B. Subdivision of the Genus Pinus (Pines). Berkeley, CA: USDA Forest Service, Pacific SW. Forest and Range Expt. Station, Miscellaneous Publication No. 1144,1969.-51 p.

Loveless M. D. Isozyme variation un tropical trees: patterns of genetic organization // New Forests.-1992.-V. 6.-№ 1-4. -P. 67-94.

Loveless M. D., Hamrick J. L. Ecological determinants of genetic structure in plant populations // Annual Revue in Ecology and Systematics.-1984.-V. 15.-№ 65-95.

Lu M.-Z., Szmidt A. E., Wang X.-R. Inheritance of RAPD fragments in haploid and diploid tissues of Pinus sylvestris (L.) // Heredity.-1995.-V. 74.-№ 582-589.

Lundkvist K. Inheritance of leucine aminopeptidase isozymes in Picea abies K. // Hereditas.-1974.-V. 76.-№ 91-96.

Lundkvist K. Inheritance of acid phosphatase isozymes in Picea abies II Hereditas.-1975.-V. 79.-№ 221-226.

Lundkvist K. Inheritance of esterases in needles and endosperms of Norway spruce (Picea abies K.) // Hereditas.-1977.-V. 87.-№ 27-32.

Lundkvist K. Allozyme frequency distributions in four Swedish populations of Norway spruce (Picea abies K.) // Hereditas.-1979.-V. 90.-№ 127-143.

Lundkvist K., Rudin D. Genetic variation in eleven populations of Picea abies as determined by isozyme analysis // Hereditas.-1977.-V. 85.-№ 67-74.

Major J. E., Mosseler A., Johnsen K. H., Rajora 0. P., Barsi D. C., Kim K. H., Park J. M., Campbell M. Reproductive barriers and hybridity in two spruces, Picea rubens and Picea mariana, sympatric in eastern North America // Canadian Journal of Botany.-2005.-V. 83.-№2. -P. 163-175.

Manchenko G. P. Handbook of detection of enzymes on electrophoretic gels. CRC Press, 1994.-574 p.

Mariette S., Chagne D., Lezier C., Pastuszka P., Baffin A., Plomion C., Kremer A. Genetic diversity within and among Pinus pinaster populations: comparison between AFLP and microsatellite markers // Heredity.-200l.-V. 86.-№ 469-479.

Mariette S., Cottrell J., Csaikl U. M., Goikoechea P., Konig A., Lowe A. J., Van Dam B. C., Barreneche T., Bodenes C., Streiff R., Burg K., Groppe K., Munro R. C., Tabbener H., Kremer A. Comparison of levels of genetic diversity detected with

AFLP and microsatellite markers within and among mixed Q. petraea (Matt.) Liebl. and Q. robur L. stands // Silvae Genetica.-2002.-V. 51.-№ 2-3. -P. 72-79.

Markert C. L., Faulhaber I. Lactate dehydrogenase isozyme patterns in fish // J. Exp. Zool.-1965.-V. 159.-№2. -P. 319-332.

Markussen T., Tusch A., Stephan B. R., Fladung M. Identification of molecular markers for selected wood properties of Norway spruce Picea abies L. (Karst.) I. Wood density// Silvae Genetica.-2004.-V. 53.-№ 2. -P. 45-50.

Markussen T., Tusch A., Stephan B. R., Fladung M. Identification of molecular markers for selected wood properties of Norway spruce Picea abies L. (Karst.) II. Extractives content//Silvae Genetica.-2005.-V. 54.-№4-5. -P. 145-152.

Mayr H. Fremdlandische Wald und Parkbaume fur Europa. Berlin: 1906.-622 p.

McCaughey W. W., Schmidt W. C. Taxonomy, distribution and history // (ed. by D. F. Tomback, S. F. Arno, R. E. Keane) Whitebark Communities: Ecology and Restoration. Washington, Covelo, London: Island Press,-2001.-P. 29-40.

Mejnartowicz L., Bergmann F. Variation and genetics of ribonucleases and phosphodiesterases in conifer seeds // Canadian Journal of Forest Research.-1977.-V. 55.-№ 6. -P. 711-717.

Millar C. I. Impact of the Eocene on the evolution of Pinus L. // Annals of the Missouri Botanical Garden.-1993.-V. 80.-№ 2. -P. 471-498.

Millar C. I. Early evolution of pines // (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge, UK: Cambridge University Press,-1998.-P. 6994.

Miller C. N., Jr. Mesozoic conifers // Botanical Review.-1977.-V. 43.-№ 2. -P. 217280.

Miller P. The Gardeners Dictionary (4th abridged edn.). London: Rivington, 1754.

Mirov N. T. Chemical analysis of the oleoresins as a means of distinguishing Jeffrey pine and western yellow pine // Journal of Forestry.-1929.-V. 27.-№ 2. -P. 176-187.

Mirov N. T. Turpentining experiments with western yellow pine in northern California // Journal of Forestiy.-1930.-V. 28.-№ 4. -P. 521-532.

Mirov N. T. The Genus Pinus. New York: The Ronald Press Company, 1967.-602 p.

Mitton J. B. Conifers // (ed. by S. Tanksley, T. Orton) Isozymes in Plant Genetics and Breeding. Amsterdam: Elsevier Publishers, B. V.,-1983.-P. 443-472.

Mitton J. B. The dynamic mating system of conifers // New Forests.-1992.-V. 6.-№ 14. -P. 197-216.

Mitton J. B., Grant M. C., Yoshino A. M. Variation in allozymes and stomatal size in pinyon (Pinus edulis, Pinaceae), associated with soil moisture // American Journal of Botany.-1998.-V. 85.-№9. -P. 1262-1265.

Mitton J. B., Kreiser B. R., Latta R. G. Glacial refugia of limber pine (Pinus flexilis James) inferred from the population structure of mitochondrial DNA // Molecular Ecology.-2000.-V. 9.-№ 1. -P. 91-97.

Mitton J. B., Linhart Y. A., Davis M. L., Sturgeon K. B. Estimation of outcrossing in ponderosa pine, Pinus ponderosa Laws., from patterns of segregation of protein polymorphisms and from frequencies of albino seedlings // Silvae Genetica.-1981.-V. 30.-№ 4-5. -P. 117-121.

Mitton J. B., Linhart Y. B., Hamrick J. L., Beckman J. S. Observations on the genetic structure and mating system of ponderosa pine in the Colorado Front Range // Theoretical and Applied Genetics.-1977.-V. 51.-№ 1. -P. 5-13.

Mofidabadi A., Kiss J., Maziktokei K., Gergacz E., Heszky L. E. Callus induction and haploid plant-regeneration from anther culture of two poplar species // Silvae Genetica.-1995.-V. 44.-№2-3. -P. 141-145.

Molina-Freaner F., Delgado P., Pinero D., Perez-Nasser N., Alvarez-Buylla E. Do rare pines need different conservation strategies? Evidence from three Mexican species // Canadian Journal of Botany-Revue Canadienne De Botanique.-2001.-V. 79.-№ 2. -P. 131-138.

Moran G. F., Bell J. C., Matheson A. C. The genetic structure and levels of inbreeding in a Pinus radiata D. Don seed orchard // Silvae Genetica.-1980.-V. 29.-№ 5/6. -P. 190-193.

Morgante M., Vendramin G. G., Giannini R. Genetics of 6-PGD and SKDH in Norway spruce (Picea abies Karst.) // Journal of Genetics and Breeding.-1989.-V. 43.-№ 2. -P. 67-71.

Morris R. W., Spieth P. T. Sampling strategies for using female gametophytes to estimate heterozygosities in conifers // Theoretical and Applied Genetics.-1978.-V. 51.-№ 217-222.

Miiller-Starck G. Protection of genetic variability in forest trees // Forest Genetics.-1995.-V. 2.-№ 3. -P. 121-124.

Muller-Starck G., Baradat P., Bergmann F. Genetic variation within European tree species //New Forests.-1992.-V. 6.-№ 1-4. -P.

Muona O., Paule L., Szmidt A. E., Karkkainen K. Mating system analysis in a Central and Northern European population of Picea abies II Scandinavian Journal of Forest Research.-1990.-V. 5.-№ 97-102.

Muona O., Yazdani R., Lindqvist G. Analysis of linkage in Picea abies II Hereditas.-1987a.-V. 106.-№ 31-36.

Muona O., Yazdani R., Rudin D. Genetic change between life stages in Pinus sylvestris: allozyme variation in seeds and planted seedlings // Silvae Genetica.-1987b.-V. 36.-№ 1. -P. 39-42.

Neale D. B., Adams W. T. Inheritance of isozyme variants in seed tissues of balsam fir (Abies balsamea) II Canadian Journal of Botany.-198 l.-V. 59.-№ 7. -P. 1285-1291.

Neale D. B., Adams W. T. Allozyme variation and mating system in balsam fir (Abies balsamea) across a continuous elevational transect // Canadian Journal of Botany.-1985a.-V. 63.-№ 12. -P. 2448-2453.

Neale D. B., Adams W. T. The mating system in natural and shelterwood stands of Douglas-fir // Theoretical and Applied Genetics.-1985b.-V. 71.-№ 201-207.

Neale D. B., Krutovsky K. V. Comparative Genetic Mapping in Trees: The Group of Conifers // (ed. by H. Lorz, G. Wenzel) Biotechnology in Agriculture and Forestry: Molecular Marker Systems. Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag,-2004.-P. 267-277.

Neale D. B., Marshall K. A., Sederoff R. R. Chloroplast and mitochondrial DNA are paternally inherited in Sequoia sempervirens D.Don Endl // Proceedings of the National Academy of Sciences (USA).-1989.-V. 86.-№ 23. -P. 9347-9349.

Neale D. B., Sederoff R. R. Paternal inheritance of chloroplast DNA and maternal inheritance of mitochondrial DNA in loblolly pine // Theoretical and Applied Genetics.-1989.-V. 77.-№ 212-216.

Neale D. B., Wheeler N. C., Allard R. W. Paternal inheritance of chloroplast DNA in Douglas-fir // Canadian Journal of Forest Research.-1986.-V. 16.-№ 1152-1154.

Nei M. Interspecific gene differences and evolutionary time estimated from electrophoretic data // American Naturalist.-1971.-V. 105.-№ 385-398.

Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals // Genetics.-1972a.-V. 89.-№ 583-590.

Nei M. Genetic distance between populations // The American Naturalist.-1972b.-V. 106.-№ 283-292.

Nei M. Analysis of gene diversity in subdivided populations // Proceedings of the National Academy of Sciences (USA).-1973.-V. 70.-№ 3321-3323.

Nei M. Molecular Population Genetics and Evolution. Amsterdam: North-Holland Publishing Inc., 1975.-

Nei M. F-statistics and analysis of gene diversity in subdivided populations // Ann. Human Genetics.-1977.-V. 41.-№ 225-233.

Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals // Genetics.-1978.-V. 89.-№ 583-590.

Nei M. Molecular Evolutionary Genetics. New York: Columbia University Press, 1987.-512 p.

Nei M., Chakravarti A. Drift variances of Fst and Gst statistics obtained from a finite number of isolated populations // Theoretical Population Biology.-1977.-V. 11.-№ 307-325.

Nei M., Chesser R. K. Estimation of fixation indices and gene diversities // Ann. Human Genetics.-1983.-V. 47.-№ 253-259.

Nei M., Maruyama T., Charaborty R. The bottleneck effect and genetic variability in populations // Evolution.- 1975.-V. 29.-№ 1-10.

Nei M., Roychoudhury A. K. Sampling variance of heterozygosity and genetic distance // Genetics.-1974.-V. 76.-№ 379-390.

Nevo E., Beiles A., Ben-Shlomo R. The evolutionary significance of genetic diversity: Ecological, demographic and life hystory correlates // (ed. by G. S. Mani) Evolutionary Dynamics of Genetic Diversity. Berlin: Springer-Verlag,-1984.-P. 13213.

Newton A. C., Allnutt T. R., Dvorak W. S., Castillo R. F. d., Ennos R. A. Patterns of genetic variation in Pinus chiapensis, a threatened Mexican pine, detected by RAPD and mitochondrial DNA RFLP markers // Heredity.-2002.-V. 89.-№ 3. -P. 191-198.

Nikaido A., Yoshimaru H., Tsumura Y., Suyama Y., Murai M., Nagasaka K. Segregation distortion for AFLP markers in Cryptomeria japonica II Genes & Genetic Systems.-1999.-V. 74.-№2. -P. 55-59.

Nikaido A. M., Ujino T., Iwata H., Yoshimura K., Yoshimura H., Suyama Y., Murai M., Nagasaka K., Tsumura Y. AFLP and CAPS linkage maps of Cryptomeria japonica II Theoretical and Applied Genetics.-2000.-V. 100.-№ 6. -P. 825-831.

Nkongolo K. K. RAPD variations among pure and hybrid populations of Picea mariana, P. rubens, and P. glauca (Pinaceae), and cytogenetic stability of Picea hybrids: identification of species-specific RAPD markers // Plant Systematics and Evolution.-1999.-V. 215.-№ 1-4. -P. 229-239.

O’Malley D. M., Allendorf F. W., Blake G. M. Inheritance of isozyme variation and heterozygosity in Pinus ponderosa II Biochemical Genetics.-1979.-V. 17.-№ 3/4. -P. 233-250.

O’Malley D. M., Guries R. P., Nordheim E. V. Linkage analysis for 18 enzyme loci in Pinus rigida Mill. // Theoretical and Applied Genetics.-1986.-V. 72.-№ 530-535.

Oline D. K., Mitton J. B., Grant M. C. Population and subspecific genetic differentiation in the foxtail pine (Pinus balfouriana) II Evolution.-2000.-V. 54.-№ 5. -P. 1813-1819.

Opiz P. M. Serznam roslin kvetene ceske. Nakladem Ceskeno museum. Mala Encyclopedie Nann. Dil X. Praha: 1852.-219 p.

Orlovic S., Guzina V., Krstic B., Merkulov L. Genetic variability in anatomical, physiological and growth characteristics of hybrid poplar (Populus x euramericana Dode (Guinier)) and eastern cottonwood (Populus deltoides Bartr.) clones // Silvae Genetica.-1998.-V. 47.-№4. -P. 183-190.

Ornstein, L., Davis B. J. Disc Electrophoresis // Distillation Products Ind. (Division of Eastman Kodak Co.).-1959.-V.

Peakall R., Smouse P. E. GenAIEx V6: Genetic Analysis in Excel. Population Genetic Software for Teaching and Research // Molecular Ecology Notes.-2006.-V. 6.-№ 1. -P. 288-295.

Penny J. S. Studies of the Conifers of the Magothy flora // American Journal of Botany.-1947.-V. 34.-№ 281-296.

Perron M., Bousquet J. Natural hybridization between black spruce and red spruce // Molecular Ecology.-1997.-V. 6.-№ 8. -P. 725-734.

Perry J. P., Jr. The Pines of Mexico and Central America. Timber Press Inc., 1991.231 p.

Petrova E. A., Goroshkevich S. N. Belokon M. M., Belokon Y. S., Politov D. V. Population genetic structure and mating system in the hybrid zone between Pinus sibirica Du Tour and Pinus pumila (Pall.) Regel at the eastern Baikal Lake shore // Annals of the Forest Research and Management Institute, Bucharest.-2007.-V. (in press).

Pilger R. Pinus II (ed. by A. Engler, K. Prantl) Die natürliche Pflanzenfamilien. Vol. XIII. Leipzig: Wilhelm,-1926.-P. 331-342.

Plessas M. E., Strauss S. H. Allozyme Differentiation among Populations, Stands, and Cohorts in Monterey Pine // Canadian Journal of Forest Research-Revue Canadienne De Recherche Forestiere.-1986.-V. 16.-№6. -P. 1155-1164.

Plomion C., Hurme P., Frigerio J. M., Ridolfi M., Pot D., Pionneau C., Avila C., Gallardo F., David H., Neutelings G., Campbell M., Canovas F. M., Savolainen 0., Bodenes C., Kremer A. Developing SSCP markers in two Pinus species // Molecular Breeding.-1999.-V. 5.-№ 1. -P. 21-31.

Politov D. V., Belokon M. M., Maluchenko 0. P., Belokon Y. S., Molozhnikov V. N., Mejnartowicz L. E., Krutovskii K. V. Genetic evidence of natural hybridization between Siberian stone pine, Pinus sibirica Du Tour, and dwarf Siberian pine, P. pumila (Pall.) Regel // Forest Genetics.-1999.-V. 6.-№ 1. -P. 41-48.

Politov D. V., Krutovskii K. V. Allozyme polymorphism, heterozygosity, and mating system of stone pines (Pinus, subsection Cembrae) // (ed. by W. C. Schmidt, F.-K. Holtmeier) Proceedings — International workshop on subalpine stone pines and their environment: The status of our knowledge. Ogden, Utah: USDA Forest Service Intermountain Research Station,-1994.-P. 36-42.

Politov D. V., Krutovsky K. V. Phylogenetics, genogeography and hybridization of 5-needle pines in Russia and neighboring countries // (ed. by R. A. Sniezko, S. Samman, S. E. Schlarbaum, H. B. Kriebel) Breeding and genetic resources of five-needle pines: growth, adaptability and pest resistance; 2001 July 23-27; Medford, OR, USA. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station,-2004.-P. 85-97.

Potenko V. V. Genetic diversity and mating system of Korean pine in Russia // (ed. by R. A. Sniezko, S. Samman, S. E. Schlarbaum, H. B. Kriebel) Breeding and genetic resources of five-needle pines: growth, adaptability and pest resistance; 2001 July 2327; Medford, OR, USA. IUFRO Working Party 2.02.15. Proceedings RMRS-P-32. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station,-2004.-P. 192-200.

Potenko V. V., Knysh Y. D. Genetic variation of Yeddo spruce populations in Russia //Forest Genetics.-2003.-V. 10.-№ 1. -P. 54-65.

Potenko V. V., Velikov A. V. Genetic diversity and differentiation of natural populations of Pinus koraiensis (Sieb. et Zucc.) in Russia // Silvae Genetica.-1998.-V. 47.-№ 4. -P. 202-208.

Potenko V. V., Velikov A. V. Allozyme variation and mating system of coastal populations of Pinus koraiensis Sieb. et Zucc. in Russia // Silvae Genetica.-2001.-V. 50.-№ 3-4. -P. 117-122.

Poulsen H. D., Simonsen V., Wellendorf H. The inheritance of six isoenzymes in Norway spruce (Picea abies (L.) Karst.) // Forest Tree Improvement. Arboretet Horsholm. Kobenhavn. Acad. Vorlag.-1983.-V. 16.-№ 12-32.

Premoli A. C. South-American Temperate Conifer Species — a Larger List // Biodiversity and Conservation.-1994.-V. 3.-№ 3. -P. 295-297.

Price R. A., Liston A., Strauss S. H. Phylogeny and systematics of Pinus II (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge: Cambridge Univ. Press,-1998.-P. 49-68.

Quellar D. C., Goodnight K. F. Estimating relatedness using genetic markers // Evolution.-1989.-V. 43.-№ 258-275.

Rajora 0., Dancik B. P. Population genetic variation, structure, and evolution in Engelmann spruce, white spruce, and their natural hybrid complex in Alberta // Canadian Journal of Botany-Revue Canadienne De Botanique.-2000.-V. 78.-№ 6. -P. 768-780.

Rajora 0. P., DeVerno L., Mosseler A., Innes D. J. Genetic diversity and population structure of disjunct Newfoundland and central Ontario populations of eastern white pine (Pinus strobus) II Canadian Journal of Botany.-1998.-V. 76.-№ 3. -P. 500-508.

Rajora 0. P., Mosseler A., Major J. E. Mating system and reproductive fitness traits of eastern white pine (Pinus strobus) in large, central versus small, isolated, marginal populations//Canadian Journal of Botany.-2002.-V. 80.-№ 11. -P. 1173-1184.

Raymond S., Weintraub L. S. Acrylamide gel as a supporting medium for zone electrophoresis // Science.-1959.-V. 130.-№ 711.

Regel. Index Semin. Horti Petropol. vol. 23. 1858.-

Regel. Bull. Soc. Imp. des Natur. de Moscou. T. XXXII. 1859.-204-237 p.

Remington D. L., Whetten R. W., Liu B. H., O’Malley D. M. Construction of an AFLP genetic map with nearly complete genome coverage in Pinus taeda II Theoretical and Applied Genetics.-1999.-V. 98.-№ 8. -P. 1279-1292.

Richardson B. A., Brunsfeld J., Klopfenstein N. B. DNA from bird-dispersed seed and wind-disseminated pollen provides insights into postglacial colonization and population genetic structure of whitebark pine (Pinus albicaulis) // Molecular Ecology.-2002.-V. ll.-№2. -P. 215-227.

Richardson D. M., Rundel P. W. Ecology and Biogeography of Pinus: an introduction // (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge: Cambridge Univ. Press,-1998.-P. 3-46.

Ridgeway Y. J., Sherburne S. W., Lewis R. D. Polymorphisms in the esterases of Atlantic herring // Transactions of the American Fisheries Society.-1970.-V. 99.-№ 147-151.

Rieseberg L. H. The role of hybridization in evolution — old wine in new skins // American Journal of Botany.-1995.-V. 82.-№ 7. -P. 944-953.

Rieseberg L. H., Archer M. A., Wayne R. K. Transgressive segregation, adaptation and speciation // Heredity.- 1999.-V. 83.-№ 363-372.

Rieseberg L. H., Baird S. J. E., Gardner K. A. Hybridization, introgression, and linkage evolution // Plant Molecular Biology.-2000.-V. 42.-№ 1. -P. 205-224.

Rieseberg L. H., Buerkle C. A. Genetic mapping in hybrid zones // American Naturalist.-2002.-V. 159.-№ S36-S50.

Rieseberg L. H., Carney S. E. Plant hybridization // New Phytologist.-1998.-V. 140,-№ 4. -P. 599-624.

Rieseberg L. H., Linder C. R. Hybrid classification: Insights from genetic map-based studies of experimental hybrids // Ecology.-1999.-V. 80.-№ 2. -P. 361-370.

Rieseberg L. H., Noyes R. D. Genetic map-based studies of reticulate evolution in plants // Trends in Plant Science.-1998.-V. 3.-№ 7. -P. 254-259.

Ritland K. Estimation of mating systems I I (ed. by S. Tanksley, T. Orton) Isozymes in Plant Genetics and Breeding. Amsterdam: Elsevier Science Publishers,-1983.-P. 289302.

Ritland K. The effective proportion of self-fertilization with consanguineous matings in inbred populations//Genetics.-1984.-V. 106.-№ 139-152.

Ritland K. Joint maximum likelihood estimation of genetic and mating structure using open-pollinated progenies // Biometrics.-1986.-V. 42.-№ 25-43.

Ritland K. A series of FORTRAN computer programs for estimating plant mating systems//Journal of Heredity.-1990.-V. 81.-№3. -P. 235-237.

Ritland K. Extensions of models for the estimation of mating systems using n independent loci // Heredity.-2002.-V. 88.-№ 221-228.

Ritland K., El-Kassaby Y. A. The nature of inbreeding in a seed orchard of Douglas-fir as shown by an efficient multilocus model // Theoretical and Applied Genetics.-1985.-V. 71.-№ 375-384.

Ritland K., Jain S. A model for the estimation of outcrossing rate and gene frequencies using n independent loci // Heredity.-198l.-V. 47.-№ 1. -P. 35-52.

Rogers D. L. Inheritance of allozymes from seed tissues of the hexaploid gymnosperm, Sequoia sempervirens (D. Don) Endl. (coast redwood) // Heredity. -1997.-V. 78.-№ 166-175.

Rogers D. L., Millar C. I., Westfall R. D. Fine-scale genetic structure of whitebark pine (Pinus albicaulis): Associations with watershed and growth form // Evolution.-1999.-V. 53.-№ 1. -P. 74-90.

Rothe G. M. Increased efficiency of Norway spruce heterozygous phosphoenolpyruvate carboxylase phenotype in response to heavy air pollution // Angewandte Botanik.-1996.-V. 69.-№ 1-2. -P. 27-30.

Rubner K. Die planzengeographischen Grundlagen des Waldbaus. Berlin: 1925.-620 P-

Rudin D. Inheritance of glutamate-oxalate-transaminases (GOT) from needles and endosperms of Pinus sylvestris II Hereditas.-1975.-V. 80.-№ 296-300.

Rudin D. Leucine-amino-peptidases (LAP) from needles and macrogametophytes of Pinus sylvestris L. Inheritance of allozymes // Hereditas.-1977.-V. 85.-№ 219-226.

Rudin D., Ekberg I. Linkage studies in Pinus sylvestris L. using macrogametophyte allozymes // Silvae Genetica.-1978.-V. 27.-№ 1. -P. 1-12.

Rzedowski J., Vela G. Pinus strobus var. chiapensis en la Serra Madre del sur de Mexico II Ciencia Méx.-1966.-V. 24.-№ 211-216.

Sakai K. I. Genetic differentiation in a natural population of forest tree species // SABRAO Newsletter.-1971.-V. 3.-№ 71-72.

Sakai K. I., Miyazakai Y., Matsuura T. Genetic studies in natural populations of forest trees. I. Genetic variability on the enzymatic level in natural forests of Thujopsis dolabrata II Silvae Genetica.-1971.-V. 20.-№ 168-173.

Sakai K. I., Park Y. G. Genetic studies in natural populations of forest trees. III.Genetic differentiation within a forest of Cryptomeria japónica II Theoretical and Applied Genetics.-1971.-V. 41.-№ 13-17.

Sato T. Leaf anatomy of the Siberian and Japanese plants of Pinus pumila Regel // Annual Report of Botanical Garden, Faculty of Science, Kanazawa University No 16.-1993a.-V. 19.

Sato T. Morphological variation of cones and ovuliferous scales in Pinus subgenus Haploxylon on Mt. Tateyama, Toyama Pref., Japan // Japanese Journal of Botany. -1993b.-V. 68.-№ 277-288.

Sato T. Seed morphology of Pinus subgenus Haploxylon on Mt. Tateyama, Toyama Pref., Japan // J Phytogeogr. Taxon.-1993c.-V. 41.-№ 7-13.

Sato T. Multivariate analysis of needle size and its anatomical traits of Pinus subgenus Haploxylon (soft pines) on Mt. Tateyama, Toyama Pref., Japan // Japanese Journal of Botany.-1995a.-V. 70.-№ 253-259.

Sato T. On the distribution of the population with idioblasts in needle of Pinus subsenus Haploxylon in Japan // Annual Report of Botanical Garden, Faculty of Science, Kanazawa University No 18.-1995b.-V. 7.

Saylor L. C. Karyotype analysis of the genus Pinus — subgenus Pinus II Silvae Genetica.-1972.-V. 21.-№ 155-163.

Saylor L. C. Karyotype analysis of the genus Pinus — subgenus Strobus II Silvae Genetica.-1983.-V. 32.-№3/4. -P. 119-124.

Schirone B., Piovesan G., Bellarosa R., Pelosi C. A taxonomic analysis of seed proteins in Pinus spp. (Pinaceae) // Plant Systematics and Evolution.-1991.-V. 178.-№ 1-2. -P. 43-53.

Schmidt-Vogt H. Genetics of Picea abies (L.) Karst // Armales Forestales (JAZV, Zagreb).-1978.-V. VII.-№5. -P. 146-186.

Schmidt-Vogt H. Die Fichte, Band I. Hamburg — Berlin: Paul Parey, 1987.-665 p.

Scholes M. C., Nowicki T. E. Effects of pines on soil properties and processes // (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge, UK: Cambridge University Press,-1998.-P. 341-354.

Scholz F., Bergmann F. Selection pressure by air pollution as studied by isozyme -gene — systems in Norway spruce exposed to sulphure dioxide // Silvae Genetica.-1984.-V. 33.-№ 6. -P. 238-240.

Schuster W. S., Alies D. L., Mitton J. B. Gene flow in limber pine: evidence from pollination phenology and genetic differentiation along an elevational transect // American Journal of Botany.-1989.-V. 76.-№ 9. -P. 1395-1403.

Schuster W. S. F., Mitton J. B. Relatedness within clusters of a bird-dispersed pine and the potential for kin interactions // Heredity.-199l.-V. 67.-№ 41-48.

Schuster W. S. F., Mitton J. B. Paternity and gene dispersal in limber pine (Pinus flexilis James) // Heredity.-2000.-V. 84.-№ 3. -P. 348-361.

Schutze-Motel J. Abteilung Nacksamer, Gymnospermae // (ed. by C. Needon) Urania II. Leipzig-Jena-Berlin: Urania Verlag,-1971.-P. 120-190.

Semerikov V. L., Lascoux M. Nuclear and cytoplasmic variation within and between Eurasian Larix (Pinaceae) species // American Journal of Botany.-2003.-V. 90.-№ 8. -P. 1113-1123.

Semerikov V. L., Semerikov L. F., Lascoux M. Intra- and interspecific allozyme variability in Eurasian Larix Mill, species // Heredity.-1999.-V. 82.-№ 193-204.

Senjo M., Kimura K., Watano Y., Ueda K., Shimizu T. Extensive mitochondrial introgression from Pinuspumila to P. parviflora var. pentaphylla (Pinaceae) // Journal of Plant Research.-1999.-V. 112.-№ 1105. -P. 97-105.

Shaw D. V., Allard R. W. Analysis of mating system parameters and population sructure in Douglas-fir using single-locus and multi-locus methods // Proceedings of the Symposium on Isozymes in the North American Forest Trees and Forest Insects (Berkeley, California, July 1979). Berkeley, California: USD A Forest Service, Pacific Southwest Forest and Range Experiment Station. General Technical Report PSW-48,-1981.-P. 18-22.

Shaw D. V., Allard R. W. Estimation of outcrossing rates in Douglas-fir using isozyme markers // Theoretical and Applied Genetics.-1982.-V. 62.-№ 113-120.

Shaw D. V., Kahler A. L., Allard R. W. A multilocus estimator of mating system parameters in plant populations // Proceedings of the National Academy of Sciences (USA).-1981.-V. 78.-№2. -P. 1298-1302.

Shaw G. R. The Pines of Mexico. Arnold Arboretum Pub. No. 1. Boston: J.R. Ruiter, 1909.-96 p.

Shaw G. R. The Genus Pinus. Arnold Arboretum Pub. No. 5. Cambridge, Massachussets: The Riverside Press, 1914.-96 p.

Shea K. L. Mating system and population structure in Engelmann spruce and subalapine fir. PhD Thesis. Boulder: University of Colorado, Department of Environmental, Population and Organism Biology, 1985.-144 p.

Shea K. L. Effects of population structure and cone production on outcrossing rates in Engelmann spruce and subalpine fir // Evolution.-1987.-V. 41.-№ 1. -P. 124-136.

Shea K. L. Segregation of allozyme loci in megagametophytes of Engelmann spruce and Subalpine fir// Genome.-1988.-V. 30.-№ 2. -P. 103-107.

Shiraishi S., Maeda H., Toda T., Seido K., Sasaki Y. Incomplete paternal inheritance of chloroplast DNA recognized in Chamaecyparis obtusa using an intraspecific

polymorphism of the trnD-trnY intergenic spacer region // Theoretical and Applied Genetics.-2001.-V. 102.-№ 6-7. -P. 935-941.

Sicialiano M. J., Shaw C. R. Separation and visualization of enzymes on gels // (ed. by I. Smith) Chromatographic and Electrophoretic Techniques. Vol. 2. Zone electrophoresis. London: William Heinemann Medical Books Ltd.,-1976.-P. 185-209.

Siebold P. F., Zuccarini I. G. Flora Japonica. vol. 2. 1842.

Simonsen V., Wellendorf H. Some polymorphic isoenzymes in the seed endosperm of Sitka spruce (Picea sitchensis (Bong.) Carr. // Forest Tree Improvement. 9. Kobenhavn: Arboretet Horsholm Akademisk Forlag,-1975.-P. 3-20.

Smithies 0. Zone electrophoresis in starch gels: group variation in the serum proteins of normal human adults // Biochem. J.-1955.-V. 61.-№ 629-641.

Smithies 0. Zone electrophoresis in starch gels and its application to studies of serum proteins // Adv. Prot. Chem.-1959.-V. 14.-№ 65.

Sniezko R. A, Samman S., Schlarbaum S. E., Kriebel H. B. (Ed.). Phylogenetics, genogeography and hybridization of 5-needle pines in Russia and neighboring countries. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station, 2004.-265 p.

Sokal R. R., Rohlf F. J. Biometry. The principles and practice of biological research. San Francisco, California: W. H. Freeman & Co., 1981.-

Sorensen F. C. The roles of polyembryony and embryo viability in the genetic system of conifers // Evolution.-1982.-V. 36.-№ 4. -P. 725-733.

StatSoft I. STATISTIC A for Windows [Computer program manual]. Tulsa, OK: StatSoft, Inc., 1998.-

Stefenon V. M., Gailing 0., Finkeldey R. Phylogenetic relationship within genus Araucaria (Araucariaceae) assessed by means of AFLP fingerprints // Silvae Genetica.-2006.-V. 55.-№ 2. -P. 45-52.

Steinhoff R., Joyce D., Fins L. Isozyme variation in Pinus monticola II Canadian Journal of Forest Research.-! 983.-V. 13.-№6. -P. 1122-1131.

Stevens G. C., Enquist B. J. Macroecological limits of the abundance and distribution of Pinus II (ed. by D. M. Richardson) Ecology and Biogeography of Pinus. Cambridge, UK: Cambridge University Press,-1998.-P. 183-192.

Stewart W. N., Rothwel G. W. Paleobotany and the Evolution of Plants. 2nd ed. Cambridge Univ. Press, 1993.-521 p.

Stopes M. C., Kershaw E. M. The anatomy of Cretacious pine leaves // Ann. Bot. (London).-1910.-V. 24.-№ 395-402.

Strauss S. H., Conkle M. T. Segregation, linkage, and diversity of allozymes in knobcone pine // Theoretical and Applied Genetics.-1986.-V. 72.-№ 4. -P. 483-493.

Strauss S. H., Doerksen A. H. Restriction fragment analysis of pine phylogeny // Evolution.-1990.-V. 44.-№ 4. -P. 1081-1096.

Strobeck C. Partial selfing and linkage: the effect of a heterotic locus on a neutral locus // Genetics.-1979.-V. 92.-№ 305-315.

Swofford D. L., Selander R. B. BIOSYS-1: a FORTRAN program for the comprehensive analysis of electrophoretic data in population genetics and systematics //Journal of Heredity.-1981.-V. 72.-№ 281-283.

Szmidt A., Muona O. Linkage relationships of allozyme loci in Pinus sylvestris II Hereditas.-1989.-V. 1 ll.-№ 91-97.

Szmidt A. E. Genetic variation in isolated populations of stone pine (Pinus cembra) // Silva Fennica.-1982.-V. 16.-№2. -P. 196-200.

Szmidt A. E., Wang X. R., Lu M. Z. Empirical assessment of allozyme and RAPD variation in Pinus sylvestris (L.) using haploid tissue analysis // Heredity.-1996.-V. 76.-№ 412-420.

Tani N., Maruyama K., Tomaru N., Uchida K., Araki M., Tsumura Y., Yoshimaru H., Ohba K. Genetic diversity of nuclear and mitochondrial genomes in Pinus parviflora Sieb. & Zucc. (Pinaceae) populations // Heredity.-2003.-V. 91.-№ 5. -P.

Tani N., Tomaru N., Araki M., Ohba K. Genetic diversity and differentiation in populations of Japanese stone pine (Pinus pumila) in Japan // Canadian Journal of Forest Research.-1996.-V. 26.-№ 8. -P. 1454-1462.

Tani N., Tomaru N., Tsumura Y., Araki M., Ohba K. Genetic structure within a Japanese stone pine (Pinus pumila Regel) population on Mt. Aino-Dake in Central Honshu, Japan//Journal of Plant Research.-1998.-V. lll.-№ 1101. -P. 7-15.

Temesgen B., Brown G. R., Harry D. E., Kinlaw C. S., Sewell M. M., Neale D. B. Genetic mapping of expressed sequence tag polymorphism (ESTP) markers in loblolly pine {Pinus taeda L.) // Theoretical and Applied Genetics.-2001.-V. 102.-№ 5. -P. 664-675.

Temesgen B., Neale D. B., Harry D. E. Use of haploid mixtures and heteroduplex analysis enhance polymorphisms revealed by denaturing gradient gel electrophoresis // Biotechniques.-2000.-V. 28.-№ 1. -P. 114-122.

Tian Y. C., Zheng J. B., Yu H. M., Liang H. Y., Li C. Q., Wang J. M. Studies of transgenic hybrid poplar 741 carrying two insect- resistant genes // Acta Botanica Sinica.-2000.-V. 42.-№ 3. -P. 263-268.

Tigerstedt P. M. A. Studies on isozyme variation in marginal and central populationsof Picea abies II Hereditas.-1973.-V. 75.-№ 47-60.

Tiselius A. The moving-boundary method of studying the electrophoresis of proteins // Nova Acta Regiae Societatis Scientiarum Upsaliensis, Ser. IV.-1930.-V. 7.-№ 4. -P.

Tiselius A. A new apparatus for electrophoretic analysis of colloidal mixtures // Transactions of the Faraday Society.-1937.-V. 33.-№ 524.

Tomback D. Nutcrackers and pines: coevolution or coadaptation? // (ed. by N. H. Nitecki) Coevolution. Chicago, IL: University of Chicago Press,-1983.-P. 179-223.

Tomback D., Hoffmann L., Sund S. Coevolution of whitebark pine and nutcrackers: implications for forest regeneration // Proc. of Symp. on Whitebark Pine Ecosystems: Ecology and Management of a High-Mountain Resource. U. S. Department of Agriculture, Forest Service Intermountain Research Station, Gen. Tech. Rep. INT-270,-1990.-P. 118-129.

Tomback D. F. Dispersal of whitebark pine seeds by Clark’s nutcracker: a mutualism hypothesis // Journal of Animal Ecology.-1982.-V. 51.-№ 451-467.

Tomback D. F., Holtmeier F. K., Mattes H., Carsey K. S., Powell M. L. Tree clusters and growth form distribution in Pinus cembra, a bird-dispersed pine // Arctic and Alpine Research.-1993.-V. 25.-№4. -P. 374-381.

Tomback D. F., Linhart Y. B. The evolution of bird-dispersed pines // Evolutionary Ecology.-1990.-V. 4.-№ 185-219.

Travis S. E., Ritland K., Whitham T. G., Keim P. A genetic linkage map of pinyon pine (Pinus edulis) based on amplified fragment length polymorphisms // Theoretical and Applied Genetics.-1998.-V. 97.-№ 5-6. -P. 871-880.

Tsumura Y. The phylogeographic structure of Japanese coniferous species as revealed by genetic markers // Taxon.-2006.-V. 55.-№ 1. -P. 53-66.

UNESCO. International classification and mapping of vegetation. Paris: UNESCO, 1973.-

Vallejos C. Enzyme activity staining // (ed. by S. D. Tanksley, T. J. Orton) Isozymes in Plant Genetics and Breeding. Amsterdam: Elsevier Science Publishers,-1983.-P. 469-516.

Vallejos C. E., Tanksley S. D. Segregation of isozyme markers and cold tolerance in an interspecific backcross of tomato // Theoretical and Applied Genetics.-1983.-V. 66.-№ 241-247.

Vandeven W. T. G., McNicol R. J. The use of RAPD markers for the identification of Sitka spruce (Picea sitchensis) clones // Heredity.-1995.-V. 75.-№ 126-132.

Vasquez J., Dvorak W. S. Trends in variances and heritabilities with stand development of tropical pines // Canadian Journal of Forest Research.-1996.-V. 26.-№ 8. -P. 1473-1480.

Vidakovic M. Conifers. Morphology and Variation. Zagreb: Graficki Zavod Hrvatske, 1991.-765 p.

Wang H., Hong J. Genetic resources, tree improvement and gene conservation of five-needle pines in East Asia // (ed. by R. A. Sniezko, S. Samman, S. E. Schlarbaum, H. B. Kriebel) Breeding and genetic resources of five-needle pines: growth, adaptability and pest resistance; 2001 July 23-27; Medford, OR, USA. IUFRO Working Party

2.02.15. Proceedings RMRS-P-32. Fort Collins, CO: U.S. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station,-2004.-P. 73-78.

Wang X. Q., Zou Y. P., Zhang D. M., Hong D. Y., Liu Z. Y. Genetic diversity analysis by RAPD in Cathaya argyrophylla Chun et Kuang // Science in China Series C — Life Sciences.-1997.-V. 40.-№ 2. -P. 145-151.

Wang X. R., Szmidt A. E., Nguyen H. N. The phylogenetic position of the endemic flat-needle pine Pinus krempfii (Pinaceae) from Vietnam, based on PCR-RFLP analysis of chloroplast DNA // Plant Systematics and Evolution.-2000.-V. 220.-№ 12. -P. 21-36.

Wang X. R., Tsumura Y., Yoshimaru H., Nagasaka K., Szmidt A. E. Phylogenetic relationships of Eurasian pines (Pinus, Pinaceae) based on chloroplast rbcL, matK, rpl20-rpsl8 spacer, and trnV intron sequences // American Journal of Botany.-1999.-V. 86.-№ 12. -P. 1742-1753.

Watano Y., Imazu M., Shimizu T. Chloroplast DNA typing by PCR-SSCP in the Pinus pumila — P. parviflora var. pentaphylla complex (Pinacea) // Journal of Plant Research.-1995.-V. 108.-№ 1092. -P. 493-499.

Watano Y., Imazu M., Shimizu T. Spatial distribution of cpDNA and mtDNA haplotypes in a hybrid zone between Pinus pumila and P. parviflora var pentaphylla (Pinaceae) // Journal of Plant Research.-1996.-V. 109.-№ 1096. -P. 403-408.

Watano Y., Kanai A., Tani N. Genetic structure of hybrid zones between Pinus pumila and P. parviflora var. pentaphylla (Pinaceae) revealed by molecular hybrid index analysis // American Journal of Botany.-2004,-V. 91.-№ 1. -P. 65-72.

Weir B. S. Genetic Data Analysis. Sunderland, Massachusetts: Sinauer Associates, 1990.-377 p.

Weir B. S., Cockerham C. C. Estimating ^-statistics for the analysis of populations structure // Evolution.-1984.-V. 38.-№ 6. -P. 1358-1370.

Wellendorf H., Simonsen V. A chemotaxonomic study in Picea with isoenzymes in the seed endosperm. Umea, Sweden: Swedish University of Agricultural Sciences, 1979.-182-193 p.

Wendel J. F., Weeden N. F. Visualization and interpretation of plant isozymes // (ed. by D. E. Soltis, P. S. Soltis) Isozymes in plant biology. Portland, Oregon, USA: Dioscorides Press,-1989.-P. 5-45.

Wolff R. L., Lavialle O., Pedrono F., Pasquier E., Deluc L. G., Marpeau A. M., Aitzetmuller K. Fatty acid composition of Pinaceae as taxonomic markers // Lipids.-2001.-V. 36.-№ 5. -P. 439-451.

Wolff R. L., Pedrono F., Marpeau A. M. Fatty acid composition of edible pine seeds with emphasis on North American and Mexican pines of the Cembroides subsection // Ocl-Oleagineux Corps Gras Lipides.-1999.-V. 6.-№ 1. -P. 107-110.

Woodmansee R. G. Clusters of limber pine trees: a hypothesis of plant — animal coaction // Southwestern Naturalist.-1977.-V. 21.-№ 511-517.

Wright J. A., Marin A. M., Dvorak W. S. Conservation and use of the Pinus chiapensis genetic resource in Colombia // Forest Ecology and Management.-1996.-V. 88.-№ 3. -P. 283-288.

Wright S. The genetical structure of population // Ann. Eugenics.-195l.-V. 15.-№ 323-354.

Wright S. The interpretation of population structure by /^-statistics with special regard to systems of mating//Evolution.-1965.-V. 19.-№ 355-420.

Wright S. The Evolution and the Genetics of Population. Vol. 2. The Theory of Gene Frequencies. Chicago, Illinois: University of Chicago Press, 1969.-511 p.

Wright S. Evolution and the Genetics of Population. Variability within and among Natural Populations. Chicago, Illinois: University of Chicago Press, 1978.-

Wu J. Y., Krutovskii K. V., Strauss S. H. Abundant mitochondrial genome diversity, population differentiation and convergent evolution in pines // Genetics.-1998.-V. 150.-№4. -P. 1605-1614.

Xue X., Wang Y., Korpelainen H., Li C. Assessment of AFLP-based genetic variation in the populations of Picea asperata II Silvae Genetica.-2005.-V. 54.-№ 1. -P. 24-30.

Yang Y. P., Wang S. L., Yin R. X. Genetic variation of isoenzymes within and among populations of Korean pine (Pinus koraiensis Sieb. et Zucc.) // Scientia Silvae Sinicae.-1989.-V. 25.-№ 3. -P. 201-208.

Yazdani R., Lindgren D. The impact of self-pollination on production of sound selfed seeds // (ed. by S. Fineschi, M. E. Malvolti, F. Cannata, H. H. Hattemer) Biochemical Markers in the Population Genetics of Forest Trees (Proceedings of International Workshop, Porano-Orvieto, Italy, October 1988). The Hague: SPB Academic Publishing B. V.,-1991.-P. 143-147.

Yazdani R., Muona O., Rudin D., Szmidt A. E. Genetic structure of a Pinus sy Ives iris L. seed-tree stand and naturally regenerated undestoiy // Forest Science.-1985.-V. 31.-№ 2. -P. 430-436.

Yeh F. C., Morgan K. Mating system and multilocus associations in a natural population of Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco // Theoretical and Applied Genetics.-1987.-V. 73.-№ 6. -P. 799-808.

Yeh F. C., Yang R. C., Boyle T. PopGene Version 1.31. Microsoft Windows-based freeware for population genetic analysis. 1998.-

Young A., Boshier D., Boyle T. Forest Conservation Genetics — Principles and Practice. CABI Publishing, 2000.-298 p.

Zavarin E., Critchfleld W. B., Snajberk K. Geographic differentiation of monoterpenes from Abies proeera and Abies magnified // Biochemical Systematics and Ecology.-1978a.-V. 6.-№ 267-278.

Zavarin E., Rafii Z., Cool L. G., Snajberk K. Geographic monoterpene variability of Pinus albieaulis // Biochemical Systematics and Ecology.-1991.-V. 19.-№ 2. -P. 147156.

Zavarin E., Snajberk K. Monoterpene differentiation in relation to the morphology of Pinus culminieola, Pinus nelsonii, Pinus pineeana and Pinus maximartinezii // Biochemical Systematics and Ecology.-1987.-V. 15.-№ 307-312.

Zavarin E., Snajberk K., Bailey D. K., Rockwell E. C. Variability in essential oil and needle resin canals of Pinus longaeva from eastern California and western Nevada to

other members of subsection Balfourianae II Biochemical Systematics and Ecology. -1982.-V. 10.-№ 11-20.

Zavarin E., Snajberk K., Critchfield W. B. Relation of cortical monoterpeniod composition of Abies to tree age and size // Phytochemistry.-1977.-V. 16.-№ 770-772.

Zavarin E., Snajberk K., Critchfield W. B. Terpenoid chemosystematic studies of Abies grandis I I Biochemical Systematics and Ecology.-1978b.-V. 5.-№ 81-93.

Zhang D. L., Dirr M. A., Price R. A. Discrimination and genetic diversity of Cephalotaxus accessions using AFLP markers // Journal of the American Society for Horticultural Science.-2000.-V. 125.-№4. -P. 404-412.

Zhang Z. Y., Li D. Z. Molecular phylogeny of section Parrya of Pinus (Pinaceae) based on chloroplast matK gene sequence data // Acta Botanica Sinica.-2004.-V. 46.-№2. -P. 171-179.

Zhelev P., Gomory D., Paule L. Inheritance and linkage of allozymes in a Balkan endemic, Pinus peuce Griseb//Journal of Heredity.-2002.-V. 93.-№ 1. -P. 60-63.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алтухов Ю.П. Динамика генофондов при антропогенных воздействиях // Информационный вестник ВОГиС. 2004. Т. 8. № 29. С. 40-59.

2. Алфимова М.В., Кондратьев Н.В., Голимбет В.Е. Результаты и перспективы генетики когнитивных нарушений при шизофрении: эпигенетические подходы // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2022. Т. 117. № 2. С. 130-135.

3. Алфимова М.В., Кондратьев Н.В., Голов А.К., Голубев С.А., и др. Связь полиморфизма ^7341475 и метилирования ДНК в гене рилина с проявлениями шизофрении // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2022. Т. 118. № 9. С. 71-76.

4. Алфимова М.В., Коровайцева Г.И., Кондратьев Н.В., Смирнова С.В. и др. Анализ роли генов опиатных рецепторов OPRD1 и OPRM1 в развитии апатии при шизофрении // Генетика. 2022. Т. 55. № 7. С. 844-848.

5. Баранов В.С. Эндометриоз как проблема системной генетики // Журнал акушерства и женских болезней. 2022. Т. 62. № 1. С. 71-78.

6. Башина В.М., Симашкова Н.В. Систематика форм течения детской шизофрении в свете отдаленного катамнеза // Журнал невропатолии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 1989. Т. 89. № 8. С. 69-75.

7. Бобровникова А.С., Тарасова С.Ю., Якимова В.В. Гендерные различия развития шизофрении // Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. 2022. №4. Публикация 7-6.

8. Боринская С.А. Генетическая адаптация популяций человека к природным и антропогенным факторам среды // Автореферат дис. … док. биол. наук. Москва: ФГБУН Институт общей генетики им. Н.И. Вавилова РАН, 2022. 51 с.

9. Бочарова А.В., Степанов В.А., Марусин А.В. и др. Анализ ассоциаций генетических маркеров шизофрении и ее когнитивных эндофенотипов // Генетика. 2022. Т. 53. № 1. С. 100-108.

10. Булейко А.А., Солдаткин В.А., Машкина Е.В., Кущенко В.В. Память, внимание, мышление больных шизофренией: связь с полом, алкоголизацией и полиморфизмом гена катехол-орто-метилтрансферазы // Медицинский вестник Юга России. 2022. Т. 8. № 3. С. 23-32.

11. Вейр Б. Анализ генетических данных, Дискретные генетические признаки / Б.С. Вейр: пер. с англ. под общ. рук. Д.В. Зайкина, А.И. Пудовкина, А.Н. Татаренкова; Л.А. Животовский, А.И. Пудовкина. М: Мир, 1995. 400 с.

12. Воевода М.И., Шахтшнейдер Е.В., Максимов В.Н. и др. Полиморфизм гена аполипопротеина Е и атеросклероз // Атеросклероз. 2008. Т. 4. № 1. С. 11 -26.

13. ВОЗ. Доклад о состоянии здравоохранения в мире. 2001 г. Психическое здоровье: новое понимание, новая надежда. М.: Весь Мир, 2001. 215 с.

14. Вознесенская Т.Г., Медведева А.В., Яхно Н.Н. Некогнитивные нейропсихические расстройства при болезни Альцгеймера и их коррекция // Неврологический журнал. 2022. Т. 15. № 4. С. 18-25.

15. Гаврилова С.И., Корсакова Н.К., Вавилов С.Б., Селезнева Н.Д., Калын Я.Б. О клинической гетерогенности деменций Альцгеймеровского типа // Журнал невропатологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 1990. Т. 90. № 9. С. 44.

16. Гаврилова С.И. Современные представления о болезни Альцгеймера // Психиатрия и психофармакотерапия. 2008. Т. 3. № 2. С. 40.

17. Гареева А.Э., Хуснутдинова Э.К. Полиморфизм генов рецепторов глутамата и риск развития параноидной шизофрении у русских и татар (республика Башкортостан) // Молекулярная биология. 2022. Т. 48. № 5. С. 771.

18. Гареева А.Э., Тракс Т., Кокс С., Хуснутдинова Э.К. Роль генов нейротрофинов и нейрексинов в развитии параноидной шизофрении у русских и татар // Генетика. 2022. Т. 51. № 7. С. 799.

19. Гареева А.Э., Хуснутдинова Э.К. Генетика шизофрении // Генетика. 2022. Т. 54. № 6. С. 585-596.

20. Гареева А.Э., Хуснутдинова Э.К. Роль межгенных взаимодействий генов нейротрофической и нейромедиаторной системы в развитии предрасположенности к параноидной шизофрении // Генетика. 2020. Т. 56. № 1. С. 89-97.

21. Гиндилис В.М. Генетика шизофренических психозов: автореф. дис. д-ра мед. наук: М., 1979. 32с.

22. Гланц С. Медико-биологическая статистика / С. Гланц. Пер. с англ. М.: Практика, 1998. 459 с.

23. Голимбет В.Е. Современные направления генетических исследований шизофрении // Психическое здоровье. 2022. Т. 16. № 3. С. 27-28.

24. Голубенко М.В., Еремина Е.Р., Тадинова В.Н., и др. Территориальная дифференциация генофонда народов Сибири и Средней Азии по рестрикционному полиморфизму митохондриальной ДНК // Медицинская генетика. 2002. Т. 1. № 3. С. 124-128.

25. Дамулин И.В. Болезнь Альцгеймера и сосудистая деменция / под ред. Н.Н. Яхно. М., 2002. 85 с.

26. Захаров В.В., Яхно Н.Н. Когнитивные расстройства в пожилом и старческом возрасте. Методическое пособие для врачей. М.: 2005. 71 с.

27. Иванова С.А., Гуткевич Е.В., Семке А.В. Апоптоз при шизофрении: генетические и психофармакологические факторы // Сибирский вестник психиатрии и наркологии. 2005. Т. 37. № 3. С. 11-13.

28. Иванова С.А., Федоренко О.Ю., Рядовая Л.А., Корнетова Е.Г., и др. Полиморфизмы генов нейромедиаторного обмена у больных шизофренией с двигательными расстройствами // Сибирский вестник психиатрии и наркологии. 2009. Т. 56. № 5. С. 31-34.

29. Иллариошкин С.Н., Клюшников С.А., Вигонт В.А., Селиверстов Ю.А., Казначеева Е.В. Молекулярный патогенез болезни Гентингтона // Биохимия. 2022. Т. 83. № 9. С. 1299-1310.

30. Киренская А.В., Сторожева З.И., Ткаченко А.А. Нейрофизиологические эндофенотипы шизофрении как инструмент для изучения внимания и контроля поведения: перспективы исследований и диагностики. СПб.: Нестор-История, 2022. 336 с.

31. Козлова И.А. Клинико-генетическое исследование детской шизофрении. Проблемы шизофрении детского и подросткового возраста. Сб. науч. тр. / Под ред. М. Ш. Вроно. М.: ВНЦПЗ, 1986. 174 с.

32. Колосова Н.Г., Дымшиц Г.М. Экспрессия генов EXT1, EXT2 и гепараназы в мозге преждевременно стареющих крыс OXYS в период раннего онтогенеза и развития нейродегенеративных изменений // Биохимия. 2022. Т. 77. № 1. С. 71-78.

33. Колосова Н.Г., Стефанова Н.А., Корболина Е.Е., Фурсова А.Ж., Кожевникова О.С. Крысы OXYS — генетическая модель преждевременного старения и связанных с ним заболеваний // Успехи геронтологии. 2022. Т. 27. № 2. С. 336-340.

34. Колыхалов И.В. Поведенческие и психопатологические симптомы при болезни Альцгеймера: эпидемиологические, психопатологические и нейробиологические аспекты // Психиатрия. 2022. № 3. С. 85-94.

35. Корнилова Е.С. Рецептор-опосредованный эндоцитоз и цитоскелет (обзор) // Биохимия. 2022. Т. 79. № 9. С. 1079-1094.

36. Коровайцева Г.И., Щербатых Т.В., Селезнева Н.Д. и др. Генетическая ассоциация между аполипопротеином Е (APOE) и различными формами болезни Альцгеймера// Генетика. 2001. Т. 37. № 4. С. 529-535.

37. Кучер А.Н. Генетика многофакторных болезней (эволюционный аспект) // Генетика человека и патология. Проблемы эволюционной медицины. Сборник научных трудов. Под редакцией В.А. Степанова. 2022. С. 17-25.

38. Кучер А.Н. Ген FTO и болезни: значимость генетического полиморфизма, эпигенетических модификаций и средовых факторов // Генетика. 2020. Т. 56. № 9. С. 985-1005.

39. Лурия А.Р. Основы нейропсихологии. М.: Академия, 2002. 381 с.

40. Макеева О.А., Бочарова А.В., Вагайцева К.В., Маркова В.В. и др. Генетическое тестирование когнитивных нарушений при болезни Альцгеймера // Методические рекомендации по медицинским технологиям диагностики и лечения хромосомных, орфанных и многофакторных заболеваний человека. Новосибирск, 2022. С. 245-260.

41. Макеева О.А., Степанов В.А. Вариабельность когнитивных функций в пожилом возрасте: как диагностировать болезнь Альцгеймера? // Генетика человека и патология: сборник научных трудов / под ред. В.А. Степанова. Вып. 11. Томск: Литературное бюро, 2022. 226 с.

42. Макушкин Е.В., Симашкова Н.В., Пережогин Л.О., Горюнов А.В. Шизофрения в детском и подростковом возрасте. Клинические рекомендации // Российский психиатрический журнал. 2022. № 6. С. 62-81.

43. Марусин А.В., Макеева О.А., Вагайцева К.В. и др. Ассоциации и межгенные взаимодействия 61 полиморфного варианта генов подверженности к нейропсихическим расстройствам с вариабельностью когнитивных способностей. пожилых людей // Генетика человека и патология: сборник научных трудов / под ред. В.А. Степанова. Вып. 11. Томск: Литературное бюро, 2022. 226 с.

44. Марусин А.В., Макеева О.А., Вагайцева К.В. и др. Ассоциация гена аполипопротеина-Е с вариабельностью когнитивных способностей пожилых людей // Медицинская генетика. 2022. Т. 17. №1. С. 20-26.

45. Медведева А.В. Нейропсихологические и электрофизиологические особенности при болезни Альцгеймера : диссертация … кандидата медицинских наук : Москва: ГОУВПО Московская медицинская академия, 2022. 156 с.

46. Мосолов С.Н. Некоторые актуальные теоретические проблемы диагностики, классификации, нейробиологии и терапии шизофрении: сравнение

зарубежного и отечественного подходов // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2022. Т. 110. № 6. С. 4-11.

47. Назаренко М.С., Пузырев В.П. Роль метилирования ДНК в развитии сердечно-сосудистых заболеваний // Комплексные проблемы сердечнососудистых заболеваний. 2022. Т. 6. № S4. С. 32.

48. Некрасов Е.Д., Лебедева О.С., Честков И.В. и др. Получение и характеристика индуцированных плюрипотентных стволовых клеток человека из фибробластов кожи пациентов с нейродегенеративными заболеваниями // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2022. Т. 6. № 4. С. 82-88.

49. Парфенов В.А., Захаров В.В., Преображенская И.С. Когнитивные расстройства. М.: Группа Ремедиум, 2022. 192 с.

50. Пичиков А.А., Попов Ю.В. Гендерный парадокс суицидального поведения // Обозрение психиатрии и медицинской психологии имени В.М. Бехтерева. 2022. №2. С. 22-29.

51. Положий Б.С., Васильев В.В. Суицидальное поведение женщин. Москва: ФГБУ ГНЦССП им. В.П. Сербского Минздравсоцразвития России, 2022. 195 с.

52. Пономарева Н.В., Андреева Т.В., Протасова М.А., Филиппова Ю.В. и др. Генетическая ассоциация гена предрасположенности к болезни Альцгеймера Р1САЬМ с показателями когнитивных слуховых вызванных потенциалов при старении // Биохимия. 2022. Т. 83. № 9. С. 1351-1360.

53. Пономарева Н.В., Фокин В.Ф., Рогаев Е.И., Иллариошкин С.Н. Эндофенотипы как генетически детерминированные биомаркеры и их значение для исследований нейродегенеративных заболеваний // Нервные болезни. 2022. № 3. С. 3-14.

54. Пузырев В.П., Кучер А.Н. Эволюционно-онтогенетические аспекты патогенетики хронических болезней человека // Генетика. 2022. Т. 47. № 12. С. 1573.

55. Пчелина С.Н., Николаев М.А., Рычков Г.Н., Копытова А.Э. и др. Молекулярные механизмы болезни Паркинсона, ассоциированной с мутациями в гене GBA. Разработка подходов к лечению // В книге: VII Съезд Вавиловского общества генетиков и селекционеров, посвященный 100-летию кафедры генетики СПбГУ, и ассоциированные симпозиумы. Сборник тезисов Международного Конгресса. 2022. С. 187.

56. Рогаев Е.И. Генетические факторы и полигенная модель болезни Альцгеймера // Генетика. 1999. Т. 35. № 11. С. 1558-1571.

57. Рогаев Е.И., Боринская С.А., Исламгулов Д.В., Григоренко А.П. МикроРНК человека в норме и патологии // Молекулярная биология. 2008. Т. 42. С. 751-764.

58. Рогаев Е.И. Генетические подходы в исследовании функций мозга и психических заболеваний // Вестник Российской академии наук. 2022. № 5 -6. С. 490.

59. Российское общество психиатров. Шизофрения (детский и подростковый возраст). Клинические рекомендации. 2022. 118 с.

60. Селезнева Н.Д., Колыхалов И.В. Некогнитивные психические расстройства при болезни Альцгеймера: симптоматология и терапия // Психиатрия и психофармакотерапия. 2001. № 2. С. 48-53.

61. Семенова Н.В., Вукс А.Я., Чернов П.Д., Лысенко И.С. Заболеваемость психическими расстройствами населения Северо-Западного федерального округа. Статистические материалы и анализ. СПб.: Издательскополиграфическая компания КОСТА, 2022. 176 с.

62. Сереброва В.Н., Трифонова Е.А., Габидулина Т.В., Степанов В.А. Анализ роли регуляторных участков дифференциально -экспрессирующихся генов плаценты в формировании наследственной предрасположенностик преэклампсии в этнических группах русских, якутов и бурят // Молекулярная диагностика 2022. Сборник трудов IX Всероссийской научно-практической конференции с международным участием. 2022. С. 106-107.

63. Сидорова М.А., Корсакова Н.К. Расстройства памяти при шизофрении // Психиатрия. 2003. № 3. С. 49-56.

64. Симашкова Н.В. Особенности клиники и терапии заболеваний шизофренического спектра в детском и подростковом возрасте // Психиатрия: национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2022. С. 280-298.

65. Снежневский А.В. Шизофрения: мультидисциплинарное исследование. М.: Медицина, 1972. 402с.

66. Степанов В.А. Геномы, популяции, болезни: этническая геномика и персонифицированная медицина // Acta Naturae (русскоязычная версия). 2022. Т. 2. № 4. С. 18-34.

67. Степанов В.А., Харьков В.Н., Пузырев В.П., Спиридонова М.Г. Генетическое разнообразие линий Y-хромосомы у народов Сибири. Генофонд населения Сибири. Новосибирск: Изд-во Инс-та археологии и этнографии СО РАН. 2003. C. 147-152.

68. Степанов В.А., Харьков В.Н., Трифонова Е.А., Марусин А.В. Методы статистического анализа в популяционной и эволюционной генетике человека (Наследственность и здоровье): учебно-методическое пособие / под ред. В.П. Пузырёва. Томск: Изд-во Печатная мануфактура, 2022. 100 с.

69. Степанов В.А. Генетическое разнообразие популяций человека и проблемы эволюционной медицины // В сборнике: Генетика человека и патология. Проблемы эволюционной медицины. Сборник научных трудов. Под редакцией В.А. Степанова. 2022. С. 7-17.

70. Степанов В.А., Макеева О.А., Марусин А.В., Харьков В.Н. и др. Генетические основы вариабельности когнитивных функций: поиск молекулярных маркеров болезни Альцгеймера // В сборнике: Молекулярная диагностика 2022. сборник трудов 1Х Всероссийской научно -практической конференции с международным участием. 2022. С. 110-111.

71. Тиганов А.С., Снежневский А.В., Орловская Д.Д. и др. Шизофрения. Психиатрия. Руководство для врачей. В двух томах. Под ред. Тиганова А.С. М.: ОАО Изд-во Медицина, 2022. 808 с.

72. Трифонова Е.А., Спиридонова М.Г., Максимова Н.Р. и др. Генетическое разнообразие и структура гаплотипов локуса MTHFR в якутской популяции // Якутский медицинский журнал. 2009. № 2 (26). С. 40-42.

73. Трифонова Е.А., Попович А.А., Вагайцева К.В. и др. Метод мультиплексного генотипирования полиморфных вариантов генов, ассоциированных с ожирением и индексом массы тела // Генетика. 2022. Т. 55. № 10. С. 1218-1230.

74. Трифонова Е.А., Сваровская М.Г., Сереброва В.Н., Куценко И.Г. и др. Геномные и постгеномные технологии в генетике преэклампсии // Генетика. 2020. Т. 56. № 5. С. 495-513.

75. Тювина Н.А., Прохорова С.В., Максимова Т.Н., Вербицкая М.С. Когнитивные нарушения при депрессии и болезни Альцгеймера: дифференциальная диагностика и подходы к терапии // Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2022. Т. 11. № 3. С. 116-123.

76. Федотова А.А., Бончук А.Н., Могила В.A., Георгиев П.Г. Белки с цинковыми пальцами типа С2Н2 — самый многочисленный и наименее изученный класс транскрипционных факторов высших эукариот // Acta Naturae. 2022. Т. 9. № 2. С. 50-61.

77. Федоренко О.Ю., Иванова С.А., Семке А.В. Влияние нативной PIP5K2A и мутантной, ассоциированной с шизофренией N251S PIP5K2A на активность нейрональных ЕААТЗ глутаматных транспортёров // Сибирский вестник психиатрии и наркологии. 2009. Т. 52. № 1. С. 14-16.

78. Федоренко О.Ю., Рудиков Е.В., Иванова С.А. Ассоциация генетических полиморфизмов PIP5K2A с шизофренией: обзор литературы // Сибирский вестник психиатрии и наркологии. 2022. Т. 67. № 4. С. 111-113.

79. Федоренко О.Ю., Падерина Д.З., Пожидаев И.В., Бойко А.С. и др. Ассоциация полиморфизма ANKK1 с шизофренией: отрицательные результаты генетического исследования // Медицинская генетика. 2020. Т. 19. № 2. С. 11-16.

80. Фрейдин М.Б. Патогенетика аллергических болезней: синтропные гены, полногеномный анализ ассоциаций, межгенные и генно-средовые взаимодействия // автореферат дис. … доктора биологических наук / Науч.-исслед. ин-т мед. генетики СО РАМН. Томск, 2022. 47 с.

81. Хитринская И.Ю., Харьков В.Н., Воевода М.И., Степанов В.А. Генетическое разнообразие и взаимоотношения популяций Северной Евразии по полиморфным инсерциям Alu-элемента // Молекулярная биология. 2022. Т. 48. № 1. С. 69.

82. Яхно Н.Н., Захаров В.В., Локшина А.Б. и др. Деменции: руководство для врачей, 3-е изд. М.: МЕДпресс-информ, 2022. 272 с.

83. https://phgkb.cdc.goV/PHGKB/hNHome.action/# — Public Health Genomics and Precision Health Knowledge Base (v6.4), 2020.

84. https://www.ebi.ac.uk/gwas/# — The NHGRI-EBI Catalog of human genome-wide association studies, 2020.

85. https://www.alzforum.org/mutations/# — Alzforum, 2020.

86. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/# — National Center for Biotechnology Information, 2020.

87. www.hapmap.org/# — International HapMap Project, 2020.

88. http://www.mocatest.org/# — The Montreal Cognitive Assessment (MoCA), 2020.

89. https://www.agenacx.com/# — Agena Bioscience’s online design tools, 2020.

90. Abdolmaleky H.M., Cheng K.H., Russo A. et al. Hypermethylation of the reelin (RELN) promoter in the brain of schizophrenic patients: a preliminary report // Am J Med Genet B Neuropsychiatr Genet. 2005. B. 134B. № 1. P. 60-66.

91. Abdolmaleky H.M., Cheng K.H., Faraone S.V. et al. Hypomethylation of MB-COMT promoter is a major risk factor for schizophrenia and bipolar disorder. Hum Mol Genet. 2006. V. 15. № 21. P. 3132-3145.

92. Aberg K.A., Liu Y., Bukszar J. et al. A comprehensive family-based replication study of schizophrenia genes // JAMA Psychiatry. 2022. V. 70. № 6. P. 573 -581.

93. Aberg K.A., Xie L.Y., McClay J.L. et al. Testing two models describing how methylome-wide studies in blood are informative for psychiatric conditions // Epigenomics. 2022. V. 5. № 4. P. 367-377.

94. Abondio P., Sazzini M., Garagnani P. et al. The Genetic Variability of APOE in Different Human Populations and Its Implications for Longevity // Genes (Basel). 2022. V. 10. № 3. P. 222.

95. Abyadeh M., Djafarian K., Heydarinejad F. et al. Association between Apolipoprotein E Gene Polymorphism and Alzheimer’s Disease in an Iranian Population: A Meta-Analysis // J Mol Neurosci. 2022. V. 69. № 4. P. 557-562.

96. Alfimova M., Kondratyev N., Golov A., Golimbet V. Relationship between Alzheimers disease-associated SNPS within the CLU gene, local DNA methylation and episodic verbal memory in healthy and schizophrenia subjects // Psychiatry Research. 2022. T. 272. C. 380-386.

97. Alfimova M.V., Lezheiko T.V., Smirnova S.V., Gabaeva M.V., Golimbet V.V. Effect of the C-reactive protein gene on risk and clinical characteristics of schizophrenia in winter-born individuals // European Neuropsychopharmacology. 2020. T. 33.

98. Allen N.C., Bagade S., McQueen M.B. et al. Systematic meta-analyses and field synopsis of genetic association studies in schizophrenia: the SzGene database // Nat Genet. 2008. V. 40. № 7. P. 827-834.

99.Alkadhi K.A. Neuroprotective Effects of Nicotine on Hippocampal Long-Term Potentiation in Brain Disorders // J Pharmacol Exp Ther. 2022. V. 366. № 3. P. 498 -508.

100. Alvira-Botero X., Carro E.M. Clearance of amyloid-ß peptide across the choroid plexus in alzheimer’s disease // Curr Aging Sci. 2022. V. 3. № 3. P. 219-229.

101. Alzheimer’s Association. Alzheimer’s disease facts and figures // Alzheimers Dement. 2022. V.11. P. 332-384.

102. Alzheimer’s Association. Alzheimer’s Disease Facts and Figures // Alzheimers Dement. 2022. V. 15. №. 3. P. 321-387.

103. Amaddeo F., Tansella M. Urbanicity and schizophrenia. From statistical association to causality? // Epidemiol Psichiatr Soc. 2006. V. 15. № 4. P. 239 -241.

104. An C.H., Je E.M., Yoo N.J., Lee S.H. Frameshift mutations of cadherin genes DCHS2, CDH10 and CDH24 genes in gastric and colorectal cancers with high microsatellite instability // Pathol Oncol Res. 2022. V. 21. № 1. P. 181-185.

105. Andrade A., Hope J., Allen A. et al. A rare schizophrenia risk variant of CACNA1I disrupts CaV3 channel activity // Sci Rep. 2022. V. 6. P. 34233.

106. Andreassen O.A., Harbo H.F., Wang Y. et al. Genetic pleiotropy between multiple sclerosis and schizophrenia but not bipolar disorder: differential involvement of immune-related gene loci // Mol Psychiatry. 2022. V. 20. P. 207-214.

107. Ang L.S., Cruz R.P., Hendel A., Granville D.J. Apolipoprotein E, an important player in longevity and age-related diseases // Exp Gerontol. 2008. V. 43. № 7. P. 615622.

108. Anttila V., Bulik Sullivan B., Finucane H.K. et al Analysis of shared heritability in common disorders of the brain // Science. 2022. V. 360. P. eaap8757.

109. Aoshiba K., Tsuji T., Itoh M. et al. An evolutionary medicine approach to understanding factors that contribute to chronic obstructive pulmonary disease // Respiration. 2022. V. 89. № 3. P. 243-252.

110. Arbor S.C., LaFontaine M., Cumbay M. Amyloid-beta Alzheimer targets -protein processing, lipid rafts, and amyloid-beta pores // Yale J Biol Med. 2022. V. 89. № 1. P/ 5-21.

111. Area-Gomez E., Schon E.A. Mitochondria-associated ER membranes and Alzheimer disease // Curr Opin Genet Dev. 2022. V. 38. P. 90-96.

112. Area-Gomez E., Schon E.A. On the Pathogenesis of Alzheimer’s Disease: The MAM Hypothesis // FASEB J. 2022. V. 31. № 3. P. 864-867.

113. Area-Gomez E., de Groof A., Bonilla E. et al. A key role for MAM in mediating mitochondrial dysfunction in Alzheimer disease // Cell Death Dis. 2022. V. 9. № 3. P. 335.

114. Ashburner M., Ball C.A., Blake J.A. et al. Gene ontology: tool for the unification of biology // The Gene Ontology Consortium. Nat Genet. 2000. V. 25. № 1. P. 25 -29.

115. Athanasiu L., Mattingsdal M., Kähler A.K. et al. Gene variants associated with schizophrenia in a Norwegian genome-wide study are replicated in a large European cohort // J Psychiatr Res. 2022. V. 44. № 12. P. 748-753.

116. Attolini C.S., Michor F. Evolutionary theory of cancer // Ann N Y Acad Sci. 2009. V. 1168. P. 23-51.

117. Auffray C., Adcock I.M., Chung K.F. et al. An integrative systems biology approach to understanding pulmonary diseases // Chest. 2022 V. 137. № 6. P. 1410 -1416.

118. Badner J.A., Gershon E.S. Meta-analysis of whole-genome linkage scans of bipolar disorder and schizophrenia // Mol Psychiatry. 2002. V. 7. № 4. P. 405-411.

119. Baker L.D., Cross D.J., Minoshima S. et al. Insulin resistance and Alzheimer-like reductions in regional cerebral glucose metabolism for cognitively normal adults with prediabetes or early type 2 diabetes // Arch Neurol. 2022. V. 68. P. 51-57.

120. Bocharova A., Vagaitseva K., Makeeva O. et al. Frequencies of alleles, genotypes and haplotypes of two polymorphisms in the Clusterin gene in the Russian elderly population categorized by cognitive performance // Data in Brief. 2022. V. 16. P. 775 -779.

121. Bao F., Deng Y., Du M. et al. Probabilistic natural mapping of gene-level tests for genome-wide association studies // Briefings in Bioinformatics. 2022. V. 19. № 4. P. 545-553.

122. Barral S, Vardarajan B.N., Reyes-Dumeyer D. et al. Genetic variants associated with susceptibility to psychosis in late-onset Alzheimer’s disease families // Neurobiol Aging. 2022. V. 36. № 11. P. 3116.e9-3116.e16.

123. Bar-Yosef T., Damri O., Agam G. Dual Role of Autophagy in Diseases of the Central Nervous System // Front Cell Neurosci. 2022. V. 13. P. 196.

124. Beck T.N., Nicolas E., Kopp M.C., Golemis E.A. Adaptors for disorders of the brain? The cancer signaling proteins NEDD9, CASS4, and PTK2B in Alzheimer’s disease // Oncoscience. 2022. V. 1. № 7. P. 486-503.

125. Bekris L.M., Yu C.E., Bird T.D., Tsuang D.W. Genetics of Alzheimer disease // J Geriatr Psychiatry Neurol. 2022. V. 23. № 4. P. 213-227.

126. Benes F.M., Lim B., Matzilevich D. et al. Regulation of the GABA cell phenotype in hippocampus of schizophrenics and bipolars // Proc Natl Acad Sci USA. 2007. V. 104. № 24. P. 10164-10169.

127. Bergem A.L., Engedal K., Kringlen E. The role of heredity in late-onset Alzheimer disease and vascular dementia. A twin study // Arch Gen Psychiatry. 1997. V. 54. № 3. P. 264-270.

128. Bergem A.L. Norwegian Twin Registers and Norwegian twin studies—an overview // Twin Res. 2002. V. 5. № 5. P. 407-414.

129. Bergen S.E., O’Dushlaine C.T., Ripke S. et al. Genome-wide association study in a Swedish population yields support for greater CNV and MHC involvement in schizophrenia compared with bipolar disorder // Mol Psychiatry. 2022. V. 17. № 9. P. 880-886.

130. Bertisch H., Li D., Hoptman M., DeLisi L. Heritability estimates for cognitive factors and brain white matter integrity as markers of schizophrenia // Am J Med Genet. 2022. V.153. B. № 4. P. 885-894.

131. Bertram L., Lange C., Mullin K. et al. Genome-wide association analysis reveals putative Alzheimer’s disease susceptibility loci in addition to APOE // Am J Hum Genet. 2008. V.83, № 5. P. 623-632.

132. Besteher B., Brambilla P., Nenadic I. Twin studies of brain structure and cognition in schizophrenia // Neurosci Biobehav Rev. 2020. V. 109. P. 103-113.

133. Bigdeli T.B., Genovese G., Georgakopoulos P. et al. Contributions of common genetic variants to risk of schizophrenia among individuals of African and Latino ancestry // Mol Psychiatry. 2022. V. 10. P. 1038/s41380-019-0517-y.

134. Blackwood D.H., Fordyce A., Walker M.T. et al. Schizophrenia and affective disorders—cosegregation with a translocation at chromosome 1q42 that directly disrupts brain-expressed genes: clinical and P300 findings in a family // Am J Hum Genet. 2001. V. 69. № 2. P. 428-433.

135. Blennow K., Mattsson N., Scholl M., Hansson O., Zetterberg H. Amyloid biomarkers in Alzheimer’s disease // Trends Pharmacol Sci. 2022. V. 36. № 5. P. 297 -309.

136. Blennow K., Dubois B., Fagan A.M. et al. Clinical utility of cerebrospinal fluid biomarkers in the diagnosis of early Alzheimer’s disease // Alzheimer’s & Dementia. 2022. V. 11. № 1. P. 58-69.

137. Bliss T.V., Cooke S.F. Long-term potentiation and long-term depression: a clinical perspective // Clinics (Sao Paulo). 2022. V. 66. № Suppl 1. P. 3-17.

138. Block J. High risk genotypes for schizophrenia may have been adaptive in the context of smallpox // Medical Hypotheses. 2020. V. 137. P. 109556.

139. Bonn S., Seeburg P.H., Schwarz M.K. Combinatorial expression of alpha- and gamma-protocadherins alters their presenilin-dependent processing // Molecular and Cellular Biology. 2007. V. 27. № 11. P. 4121-4132.

140. Bora E., Ozerdem A. Meta-analysis of longitudinal studies of cognition in bipolar disorder: comparison with healthy controls and schizophrenia // Psychol Med. 2022. V. 47. № 16. P. 2753-2766.

141. Borglum A.D., Demontis D., Grove J. et al. Genome-wide study of association and interaction with maternal cytomegalovirus infection suggests new schizophrenia loci // Mol Psychiatry. 2022. V.19. № 3. P. 325-333.

142. Bortolon C., Macgregor A., Capdevielle D., Raffard S. Apathy in schizophrenia: A review of neuropsychological and neuroanatomical studies // Neuropsychologia. 2022. V. 118(Pt B). P. 22-33.

143. Botella-Lopez A., Cuchillo-Ibanez I., Cotrufo T. et al. Beta-amyloid controls altered Reelin expression and processing in Alzheimer’s disease // Neurobiol Dis. V. 37. № 3. P. 682-691.

144. Boydell J. Risk factors for schizophrenia. Expert Rev Neurother // 2001. V. 1. № 2. P. 183-191.

145. Boydell J., van Os J., McKenzie K. et al. Incidence of schizophrenia in ethnic minorities in London: ecological study into interactions with environment // BMJ. 2001. V. 323. № 7325. P. 1336-1338.

146. Braff D.L., Freedman R., Schork N.J., Gottesman I.I. Deconstructing schizophrenia: an overview of the use of endophenotypes in order to understand a complex disorder // Schizophr Bull. 2007. V. 33. № 1. P. 21-32.

147. Brainstorm Consortium, Anttila V., Bulik-Sullivan B. et al. Analysis of shared heritability in common disorders of the brain // Science. 2022. V. 22. № 360 (6395). P. eaap8757.

148. Bray N.J. Gene expression in the etiology of schizophrenia // Schizophr Bull. 2008. V. 34. № 3. P. 412-418.

149. Breitner J.C., Gatz M., Bergem A.L., et al. Use of twin cohorts for research in Alzheimer’s disease // Neurology. 1993. V. 43. № 2. P. 261-267.

150. Briggs C.A., Chakroborty S., Stutzmann G.E. Emerging pathways driving early synaptic pathology in Alzheimer’s disease // Biochem Biophys Res Commun. 2022. V. 483. P. 988-997.

151. Brown A.S. Prenatal infection as a risk factor for schizophrenia // Schizophr Bull. 2006. V. 32. № 2. P. 200-202.

152. Bruder C.E., Piotrowski A., Gijsbers A.A. et al. Phenotypically concordant and discordant monozygotic twins display different DNA copy-number-variation profiles // Am J Hum Genet. 2008. V. 82. № 3. P. 763-771.

153. Buchanan S.M., Schalm S.S., Maniatis T. Proteolytic processing of protocadherin proteins requires endocytosis // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2022. V. 107. № 41. P. 17774-17779.

154. Buchman A.S., Boyle P.A., Yu L. et al. Total daily physical activity and the risk of AD and cognitive decline in older adults // Neurology. 2022. V. 78. P. 1323-1329.

155. Budel S., Padukkavidana T., Liu B.P. et al. Genetic variants of Nogo-66 receptor with possible association to schizophrenia block myelin inhibition of axon growth // J Neurosci. 2008. V. 28. № 49. P. 13161-13172.

156. Bufill E., Blesa R. Alzheimer’s disease and brain evolution: is Alzheimer’s disease an example of antagonistic pleiotropy? // Rev Neurol. 2006. V. 42. P. 25 -33.

157. Bufill E., Roura-Poch P., Sala-Matavera I. et al. Reelin signaling pathway genotypes and Alzheimer disease in a Spanish population // Alzheimer Dis Assoc Disord. 2022. V. 29. № 2. P. 169-172.

158. Burdach J., O’Connell M.R., Mackay J.P., Crossley M. Two-timing zinc finger transcription factors liaising with RNA // Trends Biochem Sci. 2022. V. 37. P. 199-205.

159. Butler Iii R.R., Kozlova A., Zhang H. et al. The Genetic Relevance of Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Microglia to Alzheimer’s Disease and Major Neuropsychiatric Disorders // Mol Neuropsychiatry. 2020. V. 5 (Suppl 1). P. 85-96.

160. Cannon M., Jones P.B., Murray R.M. Obstetric complications and schizophrenia: historical and meta-analytic review // Am J Psychiatry. 2002. V. 159. № 7. P. 10801092.

161. Cantor-Graae E., Selten J.P. Schizophrenia and migration: a meta-analysis and review // Am J Psychiatry. 2005. V. 162. № 1. P. 12-24.

162. Cardno A.G., Gottesman I.I. Twin studies of schizophrenia: from bow-and-arrow concordances to star wars Mx and functional genomics // Am J Med Genet. 2000. V. 97. № 1. P. 12-17.

163. Carrard A., Salzmann A., Malafosse A., Karege F. Increased DNA methylation status of the serotonin receptor 5HTR1A gene promoter in schizophrenia and bipolar disorder // J Affect Disord. 2022. V. 132. № 3. P. 450-453.

164. Castellani C.A., Awamleh Z., Melka M.G. et al. Copy number variation distribution in six monozygotic twin pairs discordant for schizophrenia // Twin Res Hum Genet. 2022. V. 17. № 2. P. 108-120.

165. Castellano J.M., Kim J., Stewart F.R. et al. Human apoE isoforms differentially regulate brain amyloid peptide clearance // Sci Transl Med. 2022. V. 3. P. 89ra57.

166. Cedazo-Mínguez A., Cowburn R.F. Apolipoprotein E: a major piece in the Alzheimer’s disease puzzle // J Cell Mol Med. 2001. V. 5. № 3. P. 254 -266.

167. Chakravarti A. Population genetics — making sense out of sequence // Nat. Genet. 1999. V. 21 (Suppl.1). P. 56-60.

168. Chang H., Xiao X., Li M. et al. The schizophrenia risk gene ZNF804A: clinical associations, biological mechanisms and neuronal functions // Mol. Psychiatry. 2022. V. 22. № 7. P. 944-953.

169. Chang W.S., Wang Y.H., Zhu X.T., Wu C.J. Genome-Wide Profiling of miRNA and mRNA Expression in Alzheimer’s Disease // Med Sci Monit. 2022. V. 23. P. 27212731.

170. Chapman R.M., Tinsley C.L., Hill M.J. et al. Convergent Evidence That ZNF804A Is a Regulator of Pre-messenger RNA Processing and Gene Expression // Schizophr Bull. 2022. V. 45. № 6. P. 1267-1278.

171. Cheah S.Y., Lawford B.R., Young R.M., Morris C.P., Voisey J. Dysbindin (DTNBP1) variants are associated with hallucinations in schizophrenia // Eur Psychiatry. 2022. V. 30. № 4. P. 486-491.

172. Chen G.B., Xu Y., Xu H.M. et al. Practical and theoretical considerations in study design for detecting gene-gene interactions using MDR and GMDR approaches // PLoS ONE. 2022. V. 6. P. e16981.

173. Cichon S., Mühleisen T.W., Degenhardt F.A. et al. Genome-wide association study identifies genetic variation in neurocan as a susceptibility factor for bipolar disorder // Am J Hum Genet. 2022. V. 88. № 3. P. 372-381.

174. Cirulli E.T., Kasperaviciute D., Attix D.K. et al. Common genetic variation and performance on standardized cognitive tests // Eur J Hum Genet. 2022. V.18. № 7. P. 815-820.

175. Cleary J.P., Walsh D.M., Hofmeister J.J. et al. Natural oligomers of the amyloid-beta protein specifically disrupt cognitive function // Nat.Neurosci. 2005. V. 8. № 1. P. 79-84.

176. Clifton N.E., Hannon E., Harwood J.C. et al. Dynamic expression of genes associated with schizophrenia and bipolar disorder across development // Transl Psychiatry. 2022. V. 9. № 1. P. 74.

177. Corder E.H., Saunders A.M., Strittmatter W.J. et al. Gene dose of apolipoprotein E type 4 allele and the risk of Alzheimer’s disease in late onset families // Science. 1993. V. 261. № 5123. P. 921-923.

178. Crespi B., Summers K., Dorus S. Adaptive evolution of genes underlying schizophrenia. Proc Biol Sci. 2007. V. 274. № 1627. P. 2801-2810.

179. Cross-Disorder Group of the Psychiatric Genomics Consortium, Lee S.H., Ripke S. et al. Genetic relationship between five psychiatric disorders estimated from genome-wide SNPs // Nat Genet. 2022. V. 45. № 9. P. 984-994.

180. Crow T.J. A Darwinian approach to the origins of psychosis // Br. J. Psychiatry. 1995. V. 167. P. 12-25.

181. Crow T.J. Is schizophrenia the price that Homo sapiens pays for language?

//

182. Schizophr. Res. 1997. V. 28. P. 127-141.

183. Crow T.J. Schizophrenia as the price that Homo sapiens pays for language: a resolution of the central paradox in the origin of the species // Brain Res. Rev. 2000. V. 31. P. 118-129.

184. Crow T.J. The ‘big bang’ theory of the origin of psychosis and the faculty of language // Schizophr. Res. 2008. V. 102. P. 31-52.

185. Crow T.J. How and why genetic linkage has not solved the problem of psychosis: review and hypothesis // Am J Psychiatry. 2007. V. 164. № 1. P. 13-21.

186. Cruchaga C., Kauwe J.S., Mayo K. et al. SNPs associated with cerebrospinal fluid phospho-tau levels influence rate of decline in Alzheimer’s disease // PLoS Genet. 2022. V. 6. № 9. P. e1001101.

187. Cui H., Dhroso A., Johnson N., Korkin D. The variation game: Cracking complex genetic disorders with NGS and omics data // Methods. 2022. V. 79-80. P. 1831.

188. Cullen W.K., Suh Y.H., Anwyl R., Rowan M.J. Block of LTP in rat hippocampus in vivo by beta-amyloid precursor protein fragments // Neuroreport. 1997. V. 8. № 15. P. 3213-3217.

189. Cummings J.L. Cholinesterase inhibitors: A new class of psychotropic compounds // Am J. Psychiatry. 2000. V. 157. № 1. P. 4-15.

190. Cummings A.C., Jiang L., Velez Edwards D.R. et al. Genome-wide association and linkage study in the Amish detects a novel candidate late-onset Alzheimer disease gene // Ann Hum Genet. 2022. V. 76. № 5. P. 342-351.

191. Daschner A., González Fernández J. Allergy in an Evolutionary Framework // J Mol Evol. 2020. V. 88. № 1. P. 66-76.

192. Dealberto M.J. Why are immigrants at increased risk for psychosis? Vitamin D insufficiency, epigenetic mechanisms, or both? // Med Hypotheses. 2007. V. 68. № 2. P. 259-267.

193. Deans P.J.M., Raval P., Sellers K.J. et al. Psychosis risk candidate ZNF804A localizes to synapses and regulates neurite formation and dendritic spine structure // Biol Psychiatry. 2022. V. 82. № 1. P. 49-61.

194. de Heredia F.P., G’omez-Mart’mez S., Marcos A. Obesity, inflammation and the immune system // Proc Nutr Soc. 2022. V. 71. P. 332-338.

195. De Jager P.L., Srivastava G, Lunnon K. et al. Alzheimer’s disease: Early alterations in brain DNA methylation at ANK1, BIN1, RHBDF2 and other loci // Nat Neurosci. 2022. V. 17. P. 1156-1163.

196. DeLisi L.E., Hoff A.L., Neale C., Kushner M. Asymmetries in the superior temporal lobe in male and female first-episode schizophrenic patients: measures of the

planum temporale and superior temporal gyrus by MRI // Schizophr Res. 1994. V. 12. № 1. P. 19-28.

197. DeLisi L.E., Shaw S.H., Crow T.J. et al. A genome-wide scan for linkage to chromosomal regions in 382 sibling pairs with schizophrenia or schizoaffective disorder // Am J Psychiatry. 2002. V. 159. № 5. P. 803-812.

198. Delles C., Husi H. Systems Biology Approach in Hypertension Research // Methods Mol Biol. 2022. V.1527. P. 69-79.

199. DeMichele-Sweet M.A., Sweet R.A. Genetics of psychosis in Alzheimer’s disease: a review // J Alzheimers Dis. 2022. V. 19. P. 761-780.

200. DeMichele-Sweet M.A.A., Weamer E.A., Klei L. et al. Genetic risk for schizophrenia and psychosis in Alzheimer disease // Mol Psychiatry. 2022. V. 23. № 4. P. 963-972.

201. Dong X., Zhang L., Meng Q., Gao Q. Association Between Interleukin-1A, Interleukin-1B, and Bridging integrator 1 Polymorphisms and Alzheimer’s Disease: a standard and Cumulative Meta-analysis // Mol Neurobiol. 2022. V. 54. № 1. P. 736747.

202. Dong Y., Yang J., Ye W. et al. LSm1 binds to the Dengue virus RNA 3′ UTR and is a positive regulator of Dengue virus replication // Int J Mol Med. 2022. V. 35. № 6. P. 1683-1689.

203. Duan X., Chang J.H., Ge S. et al. Disrupted-In-Schizophrenia 1 regulates integration of newly generated neurons in the adult brain // Cell. 2007. V. 130. № 6. P. 1146-1158.

204. Durazzo T.C., Mattsson N., Weiner M.W., Alzheimer’s Disease Neuroimaging Initiative. Smoking and increased Alzheimer’s disease risk: a review of potential mechanisms // Alzheimers Dement. 2022. V. 10. № 3 Suppl. P. S122-S145.

205. Dyrvig M., Qvist P., Lichota J. et al. DNA Methylation Analysis of BRD1 Promoter Regions and the Schizophrenia rs138880 Risk Allele // PLOS ONE. 2022. V. 12. № 1. P. e0170121.

206. Eckart N., Song Q., Yang R. et al. Functional Characterization of Schizophrenia-Associated Variation in CACNA1C // PLoS One. 2022. V. 11. № 6. P. e0157086.

207. Eichler E.E., Flint J., Gibson G. et al. Missing heritability and strategies for finding the underlying causes of complex disease // Nat Rev Genet. 2022. V. 11. № 6. P. 446-450.

208. Emanuel J., Lopez O., Houck P. et al. Trajectory of cognitive decline as a predictor of psychosis in early Alzheimer disease in the cardiovascular health study // Am J Geriatr Psychiatry. 2022. V. 19. № 2. P. 160-168.

209. Erickson K.I., Raji C.A., Lopez O.L. et al. Physical activity predicts gray matter volume in late adulthood: The Cardiovascular Health Study // Neurology. 2022. V. 75. P. 1415-1422.

210. Erickson K.I., Voss M.W., Prakash R.S. et al. Exercise training increases

211. size of hippocampus and improves memory // Proc Natl Acad Sci USA. 2022. V. 108. P. 3017-3022.

212. Evans D.A., Bennett D.A., Wilson R.S. et al. Incidence of Alzheimer disease in a biracial urban community: Relation to apolipoprotein E allele status // Arch Neurol. 2003. V. 60. № 2. P. 185-189.

213. Excoffier L., Laval G., Schneider S. Arlequin (version 3.0): an integrated software package for population genetics data analysis // Evol. Bioinform. Online. 2007. V. 1. P. 47-50.

214. Fagan A.M., Mintun M.A., Mach R.H. et al. Inverse relation between in vivo amyloid imaging load and cerebrospinal fluid Abeta42 in humans // Ann Neurol. 2006. V. 59. № 3. P. 512-519.

215. Fan X., Liu Y., Jiang J. et al. miR-20a promotes proliferation and invasion by targeting APP in human ovarian cancer cells // Acta Biochim Biophys Sin. 2022. V. 42. P. 318-324.

216. Fatemi S.H., Kroll J.L., Stary J.M. Altered level of Reelin and it is o forms in schizophrenia and mood disorders. Neuroreport. 2022. V. 12. P. 3209-3215.

217. Fatima A., Farooq M., Abdullah U. et al. Genome-Wide Supported Risk Variants in MIR137, CACNA1C, CSMD1, DRD2, and GRM3 Contribute to Schizophrenia Susceptibility in Pakistani Population // Psychiatry Investig. 2022. V. 14. № 5. P. 687-692.

218. Fedorenko O.Yu., Golimbet V.E., Ivanova S.A. et al. Opening up new horizons for psychiatric genetics in the Russian Federation: moving toward a national consortium // Molecular Psychiatry. 2022. V. 21. P. 1-13.

219. Ferreira M.A., O’Donovan M.C., Meng Y.A., et al. Collaborative genome-wide association analysis supports a role for ANK3 and CACNA1C in bipolar disorder // Nat Genet. 2008. V. 40. № 9. P. 1056-1058.

220. Finch C.E., Sapolsky R.M. The evolution of Alzheimer disease, the reproductive schedule, and apoE isoforms // Neurobiology of aging. 1999. V. 20. P. 407-428.

221. Fiore R., Khudayberdiev S., Saba R., Schratt G. MicroRNA function in the nervous system // Prog Mol Biol Transl Sci. 2022. V. 102. P. 47-100.

222. Freedman R., Coon H., Myles-Worsley M. et al. Linkage of a neurophysiological deficit in schizophrenia to a chromosome 15 locus // Proc Natl Acad Sci U S A. 1997. V. 94. № 2. P. 587-592.

223. Forero D.A., Gonzalez-Giraldo Y. Integrative In Silico Analysis of Genome-Wide DNA Methylation Profiles in Schizophrenia // J Mol Neurosci. 2020. V. 10. P. 1007/s12031-020-01585-w.

224. Fox M. ‘Evolutionary medicine’ perspectives on Alzheimer’s Disease: Review and new directions // Ageing Res Rev. 2022. V. 47. P. 140-148.

225. Fromer M., Roussos P., Sieberts S.K. et al. Gene expression elucidates functional impact of polygenic risk for schizophrenia // Nat Neurosci. 2022. V. 19. P. 1442-1453.

226. From the Centers for Disease Control and Prevention. Public health and aging: Trends in aging-United States and worldwide // JAMA. 2003. V. 289. № 11. P. 1371-1373.

227. Fullerton S.M.; Clark A.G.; Weiss K.M. et al. Apolipoprotein E variation at the sequence haplotype level: Implications for the origin and maintenance of a major human polymorphism // Am. J. Hum. Genet. 2000. V. 67. P. 881-900.

228. Gambuzza M.E., Sofo V., Salmeri F.M. et al. Toll-like receptors in Alzheimer’s disease: a therapeutic perspective // CNS Neurol Disord Drug Targets. 2022. V. 13. P. 1542-1558.

229. Gao Y., Ren R.J., Zhong Z.L. et al. Mutation profile of APP, PSEN1, and PSEN2 in Chinese familial Alzheimer’s disease // Neurobiol Aging. 2022. V. 77. P. 154-157.

230. Garatachea N., Marin P.J., Santos-Lozano A. et al. The ApoE gene is related with exceptional longevity: A systematic review and meta-analysis // Rejuvenation Res. 2022. V. 18. P. 3-13.

231. Gatz M., Reynolds C.A., Fratiglioni L. et al. Role of genes and environments for explaining Alzheimer disease // Arch Gen Psychiatry. 2006. V.63. № 2. P. 168-174.

232. GBD 2022 Disease and Injury Incidence and Prevalence Collaborators. Global, regional, and national incidence, prevalence, and years lived with disability for 354 diseases and injuries for 195 countries and territories, 1990-2022: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2022 // Lancet. 2022. V. 392. № 10159. P. 1789-1858.

233. Geng S., Wang Y., Sun Y. et al. Gene- gene interaction between CYP2J2 and PPAR -Y gene on late-onset Alzheimer’s disease in the eastern Chinese Han population // Behav Brain Res. 2022. V. 322 (Pt B). P. 362-367.

234. Getz G.S., Reardon C.A. Apoprotein E as a lipid transport and signaling protein in the blood, liver, and artery wall. J Lipid Res // 2009. V. 50. Suppl. P. S156-S161.

235. Giau V.V., Bagyinszky E., An S.S., Kim S.Y. Role of apolipoprotein E in neurodegenerative diseases // Neuropsychiatr Dis Treat. 2022. V. 11. P. 1723-1737.

236. Gibbons A.S., Udawela M., Jeon W.J. et al. The neurobiology of APOE in schizophrenia and mood disorders // Front Biosci (Landmark Ed). 2022. V. 16. P. 962979.

237. Gibson G. Decanalization and the origin of complex disease // Nat Rev Genet. 2009. V. 10. № 2. P. 134-140.

238. Girard S.L., Gauthier J., Noreau A. et al. Increased exonic de novo mutation rate in individuals with schizophrenia // Nat Genet. 2022. V. 43. № 9. P. 860863.

239. Glantz L.A., Lewis D.A. Decreased dendritic spine density on prefrontal cortical pyramidal neurons in schizophrenia // ArchGenPsychiatry. 2022. V. 57. P. 6573.

240. Glass D.J., Arnold S.E. Some evolutionary perspectives on Alzheimer’s disease pathogenesis and pathology // Alzheimers Dement. 2022. V. 8. № 4. P. 343-351.

241. Goate A., Chartier-Harlin M.C., Mullan M. et al. Segregation of a missense mutation in the amyloid precursor protein gene with familial Alzheimer’s disease // Nature. 1991. V 349. P. 704e706.

242. Goldman J.S., Hahn S.E., Bird T. Genetic counseling and testing for Alzheimer disease: Joint practice guidelines of the American College of Medical Genetics and the National Society of Genetic Counselors // Genet Med. 2022. V. 13. V. 597-605.

243. Goldstein F.C., Zhao L., Steenland K., Levey A.I. Inflammation and cognitive functioning in African Americans and Caucasians // Int J Geriatr Psychiatry. 2022. V. 30. № 9. P. 934-941.

244. Golimbet V.E., Kaleda V.G., Korovaitseva G.I., Lezheiko T.V. et al. Genetic variations associated with premorbid personality in patients with schizophrenia // S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2022. V. 119. № 3. P. 55-59.

245. Golimbet V., Korovaitseva G., Lezheiko T., Abramova L.I., Kaleda V.G. The serotonin transporter gene 5-HTTLPR polymorphism is associated with affective

psychoses but not with schizophrenia: a large-scale study in the Russian population // Journal of Affective Disorders. 2022. V. 208. P. 604-609.

246. Gorantla N.V., Chinnathambi S. Autophagic Pathways to Clear the Tau Aggregates in Alzheimer’s Disease // Cell Mol Neurobiol. 2020. P. 10.1007/s10571-020-00897-0.

247. Gottesman I.I., Shields J. A polygenic theory of schizophrenia // Proc Natl Acad Sci USA. 1967. V. 58. P. 199-205.

248. Gottesman I.I., Gould T.D. The endophenotype concept in psychiatry: etymology & strategic intentions // American Journal of Psychiatry. 2003 V. 160 P. 636-645.

249. Gozukara Bag H.G. Association between COMT gene rs165599 SNP and schizophrenia: A meta-analysis of case-control studies // Mol Genet Genomic Med. 2022. V. 6. № 5. P. 845-854.

250. Graff J., Rei D., Guan J.S. et al. An epigenetic blockade of cognitive functions in the neurodegenerating brain // Nature. 2022. V. 483. № 7388. P. 222-226.

251. Greenwood T.A., Swerdlow N.R., Gur R.E. et al. Genome-wide linkage analyses of 12 endophenotypes for schizophrenia from the Consortium on the Genetics of Schizophrenia // Am J Psychiatry. 2022. V. 170. № 5. P. 521-532.

252. Grigorenko A.P., Rogaev E.I. Molecular basics of Alzheimer’s disease // Mol Biol (Mosk). 2007. V. 41. № 2. P. 331-345.

253. Grossman I., Lutz M.W., Crenshaw D.G. et al. Alzheimer’s disease: diagnostics, prognostics and the road to prevention // Version 2. EPMA J. 2022. V. 1. № 2. P 293-303.

254. Guerreiro R.J., Beck J., Gibbs J.R. et al. Genetic variability in CLU and its association with Alzheimer’s disease // PLoS One. 2022. V. 5. № 3. P. e9510.

255. Guha S., Rees E., Darvasi A. et al. Implication of a rare deletion at distal 16p11.2 in schizophrenia // JAMA Psychiatry. 2022. V. 70. P. 253-260.

256. Guo A., Sun J., Jia P., Zhao Z. A novel microRNA and transcription factor mediated regulatory network in schizophrenia // BMC Syst Biol. 2022. V. 4. № 1. P. 10.

257. Gupta M., Chauhan C., Bhatnagar P. et al. Genetic susceptibility to schizophrenia: role of dopaminergic pathway gene polymorphisms // Pharmacogenomics. 2009. V. 10. № 2. P. 277-291.

258. Gurland B.J., Wilder D.E., Lantigua R. et al. Rates of dementia in three ethnoracial groups // Int J Geriatr Psychiatry. 1999. V. 14. № 6. P. 481-493.

259. Hales C.N., Barker D.J. The thrifty phenotype hypothesis // Br Med Bull. 2001. V. 60. P. 5-20.

260. Harman D. Aging: Overview // Ann. N. Y. Acad. Sci. 2001. V. 928. P. 1 —

21.

261. Harold D., Abraham R., Hollingworth P., et al. Genome-wide association study identifies variants at CLU and PICALM associated with Alzheimer’s disease // Nat Genet. 2009. V. 41. № 10. P. 1088-1093.

262. He K., Guo C., He L., Shi Y. MiRNAs of peripheral blood as the biomarker of schizophrenia // Hereditas. 2022. V. 155. P. 9.

263. Heinrichs R.W., Zakzanis K.K. Neurocognitive deficit in schizophrenia: a quantitative review of the evidence // Neuropsychology. 1998. V. 12. № 3. P. 426 -445.

264. Heinzen E.L., Need A.C., Hayden K.M. et al. Genome-wide scan of copy number variation in late-onset Alzheimer’s disease // J Alzheimers Dis. 2022. V. 19. № 1. P. 69-77.

265. Helbig I., Lowenstein D.H. Genetics of the epilepsies: where are we and where are we going? // Curr Opin Neurol. 2022. V. 26. P. 179-185.

266. Hersch E., Falzgraf S. Management of the behavioral and psychological symptoms of dementia // Clin Interv Aging. 2007. V. 2. № 4. P. 611-621.

267. Hilker R., Helenius D., Fagerlund B. et al. Heritability of Schizophrenia and Schizophrenia Spectrum Based on the Nationwide Danish Twin Register // Biol Psychiatry. 2022. V. 83. № 6. P. 492-498.

268. Hoffmann A., Ziller M., Spengler D. Childhood-Onset Schizophrenia: Insights from Induced Pluripotent Stem Cells // Int J Mol Sci. 2022. V. 19. № 12. P. 3829.

269. Hohman T.J., Bush W.S., Jiang L. et al. Discovery of gene-gene interactions across multiple independent data sets of late onset Alzheimer disease from the Alzheimer Disease Genetics Consortium // Neurobiol Aging. 2022. V. 38. P. 141150.

270. Hollingworth P., Harold D., Sims R. et al. Common variants at ABCA7, MS4A6A/MS4A4E, EPHA1, CD33 and CD2AP are associated with Alzheimer’s disease // Nat Genet. 2022. V. 43. № 5. P. 429-435.

271. Hollingworth P., Sweet R., Sims R. et al. Genomewide association study of Alzheimer’s disease with psychotic symptoms // Mol Psychiatry. 2022. V. 17. P. 1316— 1327.

272. Holtzman D.M., Herz J., Bu G. Apolipoprotein E and apolipoprotein E receptors: Normal biology and roles in Alzheimer disease // Cold Spring Harb Perspect Med. 2022. V. 2. № 3. P. a006312.

273. Hottin P., Bonin C. Symptomes comportementaux et psychologiques de la demence. Dans: Arcand M., Hebert R. redacteurs. Precis pratique de geriatrie. 3″ ed. Acton Vale, Quebec : Edisem; Paris: Maloine. 2007, p. 341-357.

274. Hu X., Pickering E., Liu Y.C. et al. Meta-analysis for genome-wide association study identifies multiple variants at the BIN1 locus associated with late-onset Alzheimer’s disease // PLoS One. 2022. V. 6. № 2. P. e16616.

275. Huang H.S., Akbarian S. GAD1 mRNA expression and DNA methylation in prefrontal cortex of subjects with schizophrenia // PLoS One. 2007. V. 2. № 8. P. e809.

276. Huang L., Hu F., Zeng X. et al. Further evidence for the association between the LSM1 gene and schizophrenia // Schizophr Res. 2022. V. 150. № 2-3. P. 588-589.

277. Impagnatiello F., Caruncho H., Niu S. et al. Reelin promotes hippocampal dendrite development through the VLDLR/ApoER2-Dab1 pathway // Neuron. 2004. V. 41. P. 71-84.

278. International Hap Map Consortium. A haplotype map of the human genome // Nature. 2005. V. 437. № 7063. P. 1299-1320.

279. International Schizophrenia Consortium. Rare chromosomal deletions and duplications increase risk of schizophrenia // Nature. 2008. V. 455. № 7210. P. 237 -241.

280. Ishii K., Kubo K., Nakajima K. Reelin and neuropsychiatric disorders // Front Cell Neurosci. 2022. V. 10. P. 229.

281. Ivleva E.I., Moates A.F., Hamm J.P. et al. Smooth pursuit eye movement, prepulse inhibition, and auditory paired stimuli processing endophenotypes across the schizophrenia-bipolar disorder psychosis dimension // Schizophr Bull. 2022. V. 40. № 3. P. 642-652.

282. Jablensky A., Sartorius N., Ernberg G. et al. Schizophrenia: manifestations, incidence, and course in different cultures. A World Health Organization ten-country study // Psychol Med Monogr Suppl. 1992. V.20. P. 1-97.

283. Jakovcevski M., Bharadwaj R., Straubhaar J. et al. Prefrontal cortical dysfunction after overexpression of histone deacetylase 1 // Biol Psychiatry. 2022. V. 74. № 9. P. 696-705.

284. Jiang T., Tan M.S., Tan L., Yu J.T. Application of next-generation sequencing technologies in Neurology // Ann Transl Med. 2022. V. 2. № 12. P. 125.

285. Jin L., An Z., Xu B. et al. The association between rs12807809 polymorphism in neurogranin gene and risk of schizophrenia: A meta-analysis // Medicine (Baltimore). 2022. V. 98. № 51. P. e18518.

286. Jiang Y., Xu B., Chen J. et al. Micro-RNA-137 Inhibits Tau Hyperphosphorylation in Alzheimer’s Disease and Targets the CACNA1C Gene in Transgenic Mice and Human Neuroblastoma SH-SY5Y Cells // Med Sci Monit. 2022. V. 24. P.5635-5644.

287. Johansson L. Can stress increase Alzheimer’s disease risk in women? // Expert Rev Neurother. 2022. V. 14. № 2. P. 123-125.

288. Johansson L., Guo X., Duberstein P.R. et al. Midlife personality and risk of Alzheimer disease and distress: a 38-year follow-up // Neurology. 2022. V. 83. № 17. P. 1538-1544.

289. Kalmady S.V., Venkatasubramanian G. Evidence for positive selection on Protocadherin Y gene in Homo sapiens: implications for schizophrenia // Schizophrenia Research. 2009. V. 108. № 1-3. P. 299-300.

290. Kamboh M.I., Demirci F.Y., Wang X. et al. Genome-wide association study of Alzheimer’s disease // Transl Psychiatry. 2022. P. 2:e117.

291. Kamboh M.I., Barmada M.M., Demirci F.Y. et al. Genome-wide association analysis of age-at-onset in Alzheimer’s disease // Molecular psychiatry. 2022. V. 17. № 12. P. 1340-1346.

292. Karabulut M., Gunaldi M., Alis H. et al. Serum nectin-2 levels are diagnostic and prognostic in patients with colorectal carcinoma // Clin Transl Oncol. 2022. V.18. № 2. P. 160-171.

293. Karch C.M., Goate A.M. Alzheimer’s disease risk genes and mechanisms of disease pathogenesis // Biol Psychiatry. 2022. V.77. № 1. P. 43-51.

294. Karp A., Paillard-Borg S., Wang H-X. et al. Mental, physical and social components in leisure activities equally contribute to decrease dementia risk // Dement Geriatr Cogn Disord. 2006. V. 21. P. 65-73.

295. Kecmanovic M., Dobricic V., Dimitrijevic R. et al. Schizophrenia and apolipoprotein E gene polymorphism in Serbian population // Int J Neurosci. 2022. V. 120. № 7. P. 502-506.

296. Kendler K.S., Diehl S.R. The genetics of schizophrenia: a current, genetic-epidemiologic perspective // Schizophr Bull. 1993. V. 19. № 2. P. 261-285.

297. Kirkbride J.B., Fearon P., Morgan C. et al. Neighbourhood variation in the incidence of psychotic disorders in Southeast London // Soc Psychiatry Psychiatr Epidemiol. 2007. V. 42. № 6. P. 438-445.

298. Kirov G., Gumus D., Chen W. et al. Comparative genome hybridization suggests a role for NRXN1 and APBA2 in schizophrenia // Hum Mol Genet. 2008. V. 17. № 3. P. 458-465.

299. Kirov G., Zaharieva I., Georgieva L. et al. A genome-wide association study in 574 schizophrenia trios using DNA pooling // Molecular Psychiatry. 2009. V. 14. № 8. P. 796-803.

300. Kirov G., Rees E., Walters J.T.R. et al. The penetrance of copy number variations for schizophrenia and developmental delay // Biol Psychiatry. 2022. V. 75. P. 378-385.

301. Knowles E.E., Carless M.A., de Almeida M.A. et al. Genome-wide significant localization for working and spatial memory: Identifying genes for psychosis using models of cognition // Am J Med Genet B Neuropsychiatr Genet. 2022. V. 165B № 1. P. 84-95.

302. Kohmura N., Senzaki K., Hamada S. Diversity revealed by a novel family of cadherins expressed in neurons at a synaptic complex // Neuron. 1998. V. 20. № 6. P. 1137-1151.

303. Kong A., Frigge M.L., Masson G. et al. Rate of de novo mutations and the importance of father’s age to disease risk // Nature. 2022. V. 488. № 7412. P. 471 -475

304. Koran M.E., Hohman T.J., Thornton-Wells T.A. Genetic interactions found between calcium channel genes modulate amyloid load measured by positron emission tomography // Hum Genet. 2022. V. 133. № 1. P. 85-93.

305. Kordi-Tamandani D.M., Sahranavard R., Torkamanzehi A. Analysis of association between dopamine receptor genes’ methylation and their expression profile with the risk of schizophrenia // Psychiatr Genet. 2022. V. 23. № 5. P. 183-187.

306. Korovaitseva G.I., Bukina A., Farrer L.A., Rogaev E.I. Presenilin polymorphisms in Alzheimer’s disease // Lancet. 1997. V. 350. № 9082. P. 959.

307. Kotlar A.V., Mercer K.B., Zwick M.E., Mulle J.G. New discoveries in schizophrenia genetics reveal neurobiological pathways: A review of recent findings // European Journal of Medical Genetics. 2022. V. 58. № 12. P. 704-714.

308. Kregel K.C., Zhang, H.J. An integrated view of oxidative stress in aging: Basic mechanisms, functional effects, and pathological considerations // Am. J. Physiol.Regul. Integr. Comp. Physiol. 2007. V. 292. P. R18-R36.

309. Kulminski A.M., Loika Y., Culminskaya I. et al. Independent associations of TOMM40 and APOE variants with body mass index // Aging Cell. 2022. V. 18. P. e12869.

310. Kunkle B.W., Grenier-Boley B., Sims R. et al. Genetic meta-analysis of diagnosed Alzheimer’s disease identifies new risk loci and implicates Aß, tau, immunity and lipid processing // Nat Genet. 2022. V. 51. № 3. P. 414-430.

311. Krug A., Krach S., Jansen A. et al. The effect of neurogranin on neural correlates of episodic memory encoding and retrieval // Schizophr Bull. 2022. V. 39. № 1. P. 141-150.

312. Kurita M., Holloway T., Garcia-Bea A. et al. HDAC2 regulates atypical antipsychotic responses through the modulation of mGlu2 promoter activity // Nat Neurosci. 2022. V. 15. № 9. P. 1245-1254.

313. Kushima I., Aleksic B., Ikeda M. et al. Association study of bromodomain-containing 1 gene with schizophrenia in Japanese population // Am J Med Genet B Neuropsychiatr Genet. 2022. V. 153B. № 3. P. 786-91.

314. Lam M., Chen C.Y., Li Z. et al. Comparative genetic architectures of schizophrenia in East Asian and European populations // Nat Genet. 2022. V. 51. № 12. P. 1670-1678.

315. Lambert J.C., Ibrahim-Verbaas C.A., Harold D. et al. Meta-analysis of 74,046 individuals identifies 11 new susceptibility loci for Alzheimer’s disease // Nat Genet. 2022. V. 45. № 12. P. 1452-1458.

316. Larson E.B., Wang L., Bowen J.D. et al. Exercise is associated with reduced risk for incident dementia among persons 65 years of age and older // Ann Intern Med. 2006. V. 144. P. 73-81.

317. Laursen T.M., Nordentoft M., Mortensen P.B. Excess early mortality in schizophrenia // Annu Rev Clin Psychol. 2022. V.10. P. 425-448.

318. Leduc C., Campas O., Joanny J.F. et al. Mechanism of membrane nanotube formation by molecular motors // Biochim Biophys Acta. 2022. V. 1798. № 7. P. 1418 -1426.

319. Lee J., Lee S., Ryu Y. et al. Vaccinia-related kinase 2 plays a critical role in microglia-mediated synapse elimination during neurodevelopment // Glia. 2022. V. 67. № 9. P. 1667-1679.

320. Lee J.J., Jo S.A., Park J.H. et al. Choline acetyltransferase 2384G>a polymorphism and the risk of Alzheimer disease // Alzheimer Dis Assoc Disord. 2022. V. 26. № 1. P. 81-87.

321. Lee K.M., Hawi Z.H., Parkington H.C. et al. The application of human pluripotent stem cells to model the neuronal and glial components of neurodevelopmental disorders // Mol Psychiatry. 2020. V. 25. № 2. P. 368-378.

322. Lehner B., Sanderson C.M. A protein interaction framework for human mRNA degradation // Genome Res. 2004. V. 14. № 7. P. 1315-1323.

323. Lescai F., Chiamenti A.M., Codemo A. et al. An APOE haplotype associated with decreased s4 expression increases the risk of late onset Alzheimer’s disease // J Alzheimers Dis. 2022. V. 24. № 2. P. 235-245.

324. Levinson D.F., Duan J., Oh S. et al. Copy number variants in schizophrenia: Confirmation of five previous finding sand new evidence for 3q29 microdeletions and VIPR2 duplications // Am. J. Psychiatry. 2022. V. 168. P. 302-316.

325. Levy-Lahad E., Wasco W., Poorkaj P. et al. Candidate gene for the chromosome 1 familial Alzheimer’s disease locus // Science. 1995. V. 269. P. 973e977.

326. Lewandowski K.E. Relationship of catechol-O-methyltransferase to schizophrenia and its correlates: evidence for associations and complex interactions // Harv Rev Psychiatry. 2007. V.15. № 5. P. 233-244.

327. Lewis C.M., Levinson D.F., Wise L.H. et al. Genome scan meta-analysis of schizophrenia and bipolar disorder, part II: Schizophrenia // Am J Hum Genet. 2003. V. 73. № 1. P. 34-48.

328. Li J., Zhao L., You Y. et al. Schizophrenia Related Variants in CACNA1C also Confer Risk of Autism // PLoS One. 2022. V. 10. № 7. P. e0133247.

329. Li L., Zhang X., Le W. Autophagy dysfunction in Alzheimer’s disease // Neurodegener Dis. 2022. V. 7. P. 265-271.

330. Li M., Jaffe A.E., Straub R.E. et al. A human-specific AS3MT isoform and BORCS7 are molecular risk factors in the 10q24. 2 schizophrenia-associated locus // Nat Med. 2022. V. 22. P. 649-656.

331. Li M., Wang Y., Zheng X.B. et al. Meta-analysis and brain imaging data support the involvement of VRK2 (rs2312147) in schizophrenia susceptibility // Schizophr Res. 2022. V. 142. № 1-3. P. 200-205.

332. Li M., Yue W. VRK2, a Candidate Gene for Psychiatric and Neurological Disorders // Mol Neuropsychiatry. 2022. V. 4. № 3. P. 119-133.

333. Li R., Ma X., Wang G., Yang J., Wang C. Why sex differences in schizophrenia? // J Transl Neurosci (Beijing). 2022. V. 1. № 1. P. 37-42.

334. Li T., Li Z., Chen P. et al. Common variants in major histocompatibility complex region and TCF4 gene are significantly associated with schizophrenia in Han Chinese // Biol Psychiatry. 2022. V. 68. № 7. P. 671-673.

335. Li Q., Liu Y., Sun M. Autophagy and Alzheimer’s disease // Cell. Mol. Neurobiol. 2022. V. 37. P. 377-388.

336. Liao Y., Wang J., Jaehnig E.J., Shi Z., Zhang B. WebGestalt 2022: gene set analysis toolkit with revamped Uls and APIs // Nucleic Acids Res. 2022. V. 47. № W1. P. W199-W205.

337. Lijffijt M., Lane S.D., Meier S.L. et al. P50, N100, and P200 sensory gating: relationships with behavioral inhibition, attention, and working memory. Psychophysiology // 2009. V. 46. № 5. P. 1059-1068.

338. Loo S.K., Shtir C., Doyle A.E. et al. Genome-wide association study of intelligence: additive effects of novel brain expressed genes // J Am Acad Child Adolesc Psychiatry. 2022. V. 51. № 4. P. 432-440.

339. Lord J., Cruchaga C. The epigenetic landscape of Alzheimer’s disease // Nat Neurosci. 2022. V. 17. P. 1138-1140.

340. Loy C.T., Schofield P.R., Turner A.M., Kwok J.B.J. Genetics of dementia // Lancet. 2022. V. 383. P. 828-840.

341. Lu S.J., Li H.L., Sun Y.M. et al. Clusterin variants are not associated with southern Chinese patients with Alzheimer’s disease. Neurobiol Aging // 2022. V. 35. № 11. P. 2656.e9-2656.e11.

342. Luo X., Klempan T.A., Lappalainen J. et al. NOTCH4 gene haplotype is associated with schizophrenia in African Americans // Biol Psychiatry. 2004. V. 55. № 2. P. 112-117.

343. Lou X.Y., Chen G.B., Yan L. et al. A Generalized Combinatorial Approach for Detecting Gene-by-Gene and Gene-by-Environment Interactions with Application to Nicotine Dependence // Am J Hum Genet. 2007. V. 80. P. 1125-1137.

344. Lunetta K.L., D’Agostino R.B., Karasik D. et al. Genetic correlates of longevity and selected age-related phenotypes: a genome-wide association study in the Framingham Study // BMC Medical Genetics. 2007. V. 8. № Suppl 1. P. S13.

345. Lunnon K., Smith R., Hannon E. et al. Methylomic profiling implicates cortical deregulation of ANK1 in Alzheimer’s disease // Nat Neurosci. 2022. V. 17. P. 1164-1170.

346. Lyketsos C.G., Steinberg M., Tschanz J.T. et al. Mental and behavioral disturbances in dementia: findings from the Cache County Study on Memory in Aging // Am J Psychiatry. 2000. V. 157. P. 708-714.

347. Ma F.C., Wang H.F., Cao X.P. et al. Meta-Analysis of the Association between Variants in ABCA7 and Alzheimer’s Disease // J Alzheimers Dis. 2022. V. 63. № 4. P. 1261-1267.

348. Macdonald M.L., Alhassan J., Newman J.T. et al. Selective Loss of Smaller Spines in Schizophrenia // Am J Psychiatry. 2022. V. 174. № 6. P. 586-594.

349. Mahley R.W. Apolipoprotein E: cholesterol transport protein with expanding role in cell biology // Science. 1988. V. 240. № 4852. P. 622-630.

350. Mahley R.W., Huang Y. Apolipoprotein (apo) E4 and Alzheimer’s disease: unique conformational and biophysical properties of apoE4 can modulate neuropathology // Acta Neurol Scand Suppl. 2006. V. 185. P. 8-14.

351. Mahley R.W. Apolipoprotein E: from cardiovascular disease to neurodegenerative disorders // J Mol Med (Berl). 2022. V. 94. № 7. P. 739-746.

352. Mäkelä M., Kaivola K., Valori M. et al. Alzheimer risk loci and associated neuropathology in a population-based study (Vantaa 85 ) // Neurol Genet. 2022. V. 4. № 1. P. e211.

353. Malhotra D., McCarthy S., Michaelson J.J. et al. High frequencies of de novo CNVs in bipolar disorder and schizophrenia // Neuron. 2022. V. 72. P. 951-963.

354. Malhotra D., Sebat J. CNVs: harbingers of a rare variant revolution in psychiatric genetics // Cell. 2022. V. 148. P. 1223-1241.

355. Manoach D.S., Agam Y. Neural markers of errors as endophenotypes in neuropsychiatric disorders // Front Hum Neurosci. 2022. V. 7. P. 350.

356. Manolio T.A., Collins F.S., Cox N.J. et al. Finding the missing heritability of complex diseases // Nature. 2009. V. 461. № 7265. P. 747-753.

357. Maoz R., Garfinkel B.P., Soreq H. Alzheimer’s Disease and ncRNAs // Adv Exp Med Biol. 2022. V. 978. P. 337-361.

358. Marshall C.R., Howrigan D.P., Merico D. et al. Contribution of copy number variants to schizophrenia from a genome-wide study of 41,321 subjects // Nat. Genet. 2022. V. 49. P. 27-35.

359. Martin E.R., Ritchie M.D., Hahn L. et al. A novel method to identify genegene effects in nuclear families: the MDR-PDT // Genet Epidemiol. 2006. V. 30. № 2. P. 111-123.

360. Mathew C.G. The isolation of high molecular weight eukaryotic DNA // Methods Mol Biol. 1985. V. 2. P. 31-34.

361. Matthews J.M., Sunde M. Zinc fingers—folds for many occasions // IUBMB Life. 2002. V. 54. № 6. P. 351-355.

362. McCarthy S.E., Makarov V., Kirov G. et al. Microduplications of 16p11.2 are associated with schizophrenia // Nat Genet. 2009. V. 41. P. 1223-1227.

363. McClellan J.M., Susser E., King M.C. Schizophrenia: a common disease caused by multiple rare alleles // Br J Psychiatry. 2007. V. 190. P. 194-199.

364. McGrath J.J., Welham J.L. Season of birth and schizophrenia: a systematic review and meta-analysis of data from the Southern Hemisphere // Schizophr Res. 1999. V. 35. № 3. P. 237-242.

365. McGrath J., Saha S., Welham J., El Saadi O. et al. A systematic review of the incidence of schizophrenia: the distribution of rates and the influence of sex, urbanicity, migrant status and methodology // BMC Med. 2004 V. 2. P. 13.

366. McGrath J., Saha S., Chant D., Welham J. Schizophrenia: a concise overview of incidence, prevalence, and mortality // Epidemiol Rev. 2008. V. 30. P. 6776.

367. McMahon F.J., Akula N., Schulze T.G. et al. Meta-analysis of genome-wide association data identifies a risk locus for major mood disorders on 3p21.1 // Nat Genet. 2022. V. 42. № 2. P. 128-131.

368. Mehler M. F. Epigenetics and the nervous system // Annals of Neurology. 2008. V. 64. № 6. P. 602-617.

369. Mei L., Xiong W.C. Neuregulin 1 in neural development, synaptic plasticity and schizophrenia // Nat Rev Neurosci. 2008. V. 9. № 6. P. 437-452.

370. Mellios N., Huang H.S., Baker S.P. et al. Molecular determinants of dysregulated GABAergic gene expression in the prefrontal cortex of subjects with schizophrenia // Biol Psychiatry. 2009. V.65. № 12. P. 1006-1014.

371. Merenlender-Wagner A., Malishkevich A., Shemer Z. et al. Autophagy has a key role in the pathophysiology of schizophrenia // Mol Psychiatry. 2022. V. 20. P. 126-132.

372. Michaelson D.M. APOE s4: The most prevalent yet understudied risk factor for Alzheimer’s disease // Alzheimers Dement. 2022. V. 10. P. 861 -868.

373. Mimics K., Middleton F.A., Stanwood G.D., Lewis D.A., Levitt P. Disease-specific changes in regulator of G-protein signaling 4 (RGS4) expression in schizophrenia // Mol Psychiatry. 2001. V. 6. № 3. P. 293-301.

374. Mitchell A.C., Javidfar B., Pothula V. et al. MEF2C transcription factor is associated with the genetic and epigenetic risk architecture of schizophrenia and improves cognition in mice // Mol Psychiatry. 2022. V. 23. № 1. P. 123-132.

375. Miyashita A., Hatsuta H., Kikuchi M. et al. Genes associated with the progression of neurofibrillary tangles in Alzheimer’s disease // Transl Psychiatry. 2022. V. 4. № 6. P. e396.

376. Mohammadi A., Amooeian V.G., Rashidi E. Dysfunction in Brain-Derived Neurotrophic Factor Signaling Pathway and Susceptibility to Schizophrenia, Parkinson’s and Alzheimer’s Diseases // Curr Gene Ther. 2022. V. 18. № 1. P. 45-63.

377. Monsalve D.M., Merced T., Fernandez I.F. et al. Human VRK2 modulates apoptosis by interaction with Bcl-xL and regulation of BAX gene expression // Cell Death Dis. 2022. V. 4. P. e513.

378. Montano C., Taub M.A., Jaffe A. et al. Association of DNA Methylation Differences With Schizophrenia in an Epigenome-Wide Association Study // JAMA Psychiatry. 2022. V. 73. № 5. P. 506-514.

379. Moore T.H., Zammit S., Lingford-Hughes A. et al. Cannabis use and risk of psychotic or affective mental health outcomes: a systematic review // Lancet. 2007. V. 370. № 9584. P. 319-328.

380. Moreno-Grau S., de Rojas I., Hernández I. et al. Genome-wide association analysis of dementia and its clinical endophenotypes reveal novel loci associated with Alzheimer’s disease and three causality networks: The GR@ACE project2022 // Alzheimers Dement. 2022. V. 15. № 10. P. 1333-1347.

381. Morris M.C., Brockman J., Schneider J.A. et al. Association of seafood consumption, brain mercury level, and APOE s4 status with brain neuropathology in older adults // JAMA. 2022. V. 15. P. 489-497.

382. Mortensen P.B., Pedersen C.B., Westergaard T. et al. Effects of family history and place and season of birth on the risk of schizophrenia // N Engl J Med. 1999. V. 340. № 8. P. 603-608.

383. Motsinger, A.A. Multifactor dimensionality reduction: an analysis strategy for modelling and detecting gene-gene interactions in human genetics and pharmacogenomics studies // Hum Genomics. 2006. P. 318-328.

384. M-Rabet M., Cabaud O., Josselin E. et al. Nectin-4: a new prognostic biomarker for efficient therapeutic targeting of primary and metastatic triple-negative breast cancer // Ann Oncol. 2022. V. 28. № 4. P. 769-776.

385. Mulder S., Hamidi H., Kretzler M., Ju W. An integrative systems biology approach for precision medicine in diabetic kidney disease // Diabetes Obes Metab. 2022. V. 20 Suppl 3. P. 6-13.

386. Mulle J.G., Dodd A.F., McGrath J.A. et al. Microdeletions of 3q29 confer high risk for schizophrenia // Am J Hum Genet. 2022. V. 87. P. 229-236.

387. Muller N., Schwarz M.J. Immune system and schizophrenia // Curr Immunol Rev. 2022. V. 6. № 3. P. 213-220.

388. Murray P.S., Kumar S., Demichele-Sweet M.A., Sweet R.A. Psychosis in Alzheimer’s disease // Biol Psychiatry. 2022. V. 75. P. 542-552.

389. Naj A.C., Jun G., Beecham G.W. et al. Common variants at MS4A4/MS4A6E, CD2AP, CD33 and EPHA1 are associated with late-onset Alzheimer’s disease // Nat Genet. 2022. V. 43. № 5. P. 436-441.

390. Naj A.C., Jun G., Reitz C. et al. Effects of multiple genetic loci on age at onset in late-onset Alzheimer disease: a genome-wide association study // JAMA Neurol. 2022. V. 71. № 11. P. 1394-1404.

391. Nalls M.A., Blauwendraat C., Vallerga C.L. et al. Identification of novel risk loci, causal insights, and heritable risk for Parkinson’s disease: a meta-analysis of genome-wide association studies // Lancet Neurol. 2022. V. 18. № 12. P. 1091-1102.

392. Need A.C., Attix D.K., McEvoy J.M. et al. A genome-wide study of common SNPs and CNVs in cognitive performance in the CANTAB // Hum Mol Genet. 2009. V. 18. № 23. P. 4650-4661.

393. Neel J.V. Diabetes mellitus: a thrifty genotype rendered detrimental by progress? // Am J Hum Genet. 1962. V. 14. № 4. P. 353-362.

394. Nei M. Molecular evolutionary genetics. New York: Columbia Univ. Press, 1987. 512 p.